Кровь из пальца и вены какие отличия. Чем отличается артериальная кровь от венозной

В некоторых ситуациях повышение уровня глюкозы в плазме крови считается нормальным явлением. Такие ситуации характерны при травмировании. В случае оказания на человека сильной эмоциональной нагрузки, в период вынашивания плода, при оказании на человека высоких физнагрузок. Явление гипергликемии в таких ситуациях наблюдается непродолжительное время.

О наличии патпроцессов, повышающих уровень сахара, свидетельствует длительное и устойчивое увеличение концентрации глюкозы в плазме. Причиной таких нарушений являются сбои в функционировании эндокринной системы, обеспечивающей регулировку обменных процессов.

Для определения количества глюкозы используются лабораторные анализы, для этого берется кровь на сахар из вены и из пальца.

Подготовка к анализу и взятие биоматериала

Чтобы анализ крови на сахар из вены и из пальца был точным, требуется правильно подготавливаться к их сдаче, а в процессе подготовки соблюдать определенные правила.

За два дня до планируемой сдачи биоматериала требуется отказаться от использования лекарственных препаратов, табакокурения, употребления напитков, содержащих алкоголь и наркотиков. Непосредственно перед взятием материала на анализ требуется снизить физнагрузку на организм. Перед тем как сдавать биоматериал, следует исключить возможность сильного эмоционального воздействия на психику.

За 12 часов до того, как кровь берут из вены или из пальца, нужно полностью исключить прием пищи.

Огромное влияние на концентрацию глюкозы оказывает рацион питания. Обязательным условием получения достоверных данных является отказ за двое суток до того, как возьмут кровь на сахар из вены или пальца, от соленых, острых и жирных блюд. Непосредственно перед проведением забора биоматериала нежелательно употреблять в пищу еду, содержащую красители.

Взятие биоматериала осуществляется натощак. Отказ от приема еды должен быть осуществлен минимум за 12 часов до процедуры. Запрещено перед посещением лаборатории использовать жевательные резинки и зубную пасту, это связано с тем, что в состав этих продуктов очень часто входит углевод, который после контактирования с деснами проникает в кровяное русло.

Анализ крови из вены и из пальца – в чем разница?

На вопрос о том, какой анализ крови на сахар является точнее, из пальца или из вены, можно ответить утвердительно. Данные полученные путем исследования биоматериала полученного из капиллярной сети являются менее точными по ряду причин. Дело в том, что на качество может оказывать влияние большое количество факторов, таких как, например, зябкость рук, абстинентный синдром и наркотическая ломка.

Венозная кровь, лишенная воздействия на ее состав тканевых метаболитов, информирует о среднем и более точном для всего организма содержании глюкозы.

Норма в биоматериале, взятом из венозного русла, должна колебаться в приделах 4.6-6.1, а в плазме, полученной из капиллярной сетки от 3.3 до 5.5 ммоль/л.

Исследование на концентрацию глюкозы может быть осуществлено в лаборатории любого лечебного учреждения, после получения направления на проведение исследования от лечащего врача, которым может являться эндокринолог, терапевт или педиатр.

Норма глюкозы в плазме детей и беременных, зависимость от возраста

На глюкозу существенное влияние оказывает не только физнагрузка и стрессовые ситуации. Существенно могут повлиять возраст человека, его пол, и особое физиологическое состояние организма, которым может являться, например, беременность.

Концентрация углеводов у беременной в норме значительно выше, чем в обычном состоянии, что связано с оказанием на организм большой нагрузки, требующей интенсификации обменных процессов.

Проводится как минимум два раза за весь период вынашивания ребенка. Первые замеры осуществляются в период с 8 по 12 неделю, а второе измерение проводится на 30 недели вынашивания плода.

Исследованиями установлено, что нормальное содержание для будущей матери углеводов в плазме составляет:

• 9-6 ммоль/л для биоматериала из капиллярной сети;
• 7 ммоль/л при анализе венозной крови.

При наличии отклонений проводится исследование при помощи теста на толерантность к глюкозе. В некоторых случаях может применяться фруктозаминовый тест или исследование определяющее количество гликированного гемоглобина.

Нормальные показатели у мужчин и женщин, не вынашивающих ребенка, являются одинаковыми, но у детей норма находится в зависимости от возраста ребенка и составляет:

1. Возраст до года - 2.8-4.4 ммоль/л.
2. От года до 5 лет – 3.3-5.0.
3. При возрасте старше 5 лет, у ребенка данные соответствуют взрослому человеку и колеблются в диапазоне от 3.3 до 5.5 ммоль/л.

Изменения количества глюкозы может наблюдаться на протяжении жизни человека. Чем становится старше человек, тем сильнее сдвигаются в сторону увеличения как нижние, так и верхние показатели.

В зависимости от возраста исследуемого нормальным считается следующее количество глюкозы в организме при исследовании биоматериала из капиллярной сети:

• дети до одного года - 2.8 ммоль/л;
• дети в возрасте до 14 лет – 2.8-5.6 ммоль/л;
• мужчины и женщины в диапазоне от 14 до 59 лет – 4.1-5.9 ммоль/л
• люди пожилого возраста старше 60 лет – 4.6-6.5 ммоль/л.

Количество глюкозы в организме изменяется также на протяжении суток:

1. В утренние часы на голодный желудок норма составляет 3.9-5.8 ммоль/л.
2. Спустя час после принятия пищи – до 8.9 ммоль/л.
3. Перед обедом - колеблется от 3.9 до 6.1.
4. Перед ужином уровень составляет 3.9-6.1.
5. В ночное время между 2 и 4 часами - колеблется возле отметки 3.9 ммоль/л.

Для человеческого организма как увеличение, так и значительное снижение уровня углеводов является опасным состоянием.

Расшифровка результатов анализа

Если в результате клинического исследования выявляется наличие концентрации сахаров в плазме в диапазоне 5.6-6.0 ммоль/л, то врач предполагает наличие у больного преддиабетического состояния. В случае превышения указанных показателей мужчинам и женщинам ставится диагноз сахарный диабет.

Для подтверждения предполагаемого диабета больному назначается проведение повторного исследования. Помимо этого проводится анализ на выявление количественных показателей гликозилированного гемоглобина.

В некоторых случаях проводятся нагрузочные тесты с глюкозой. Перед проведением тестов проводится забор натощак для определения исходного значения.

После получения исходного показателя содержания глюкозы, проведение теста на определение гликозилированного гемоглобина проводится следующим способом:

• в 200 мл воды растворяется 75 г глюкозы, раствор выпивает пациент;
• спустя 30 мин, один час и два часа проводится забор материала для проведения повторных анализов.

Забор крови осуществляется из вены. При проведении теста с ребенком до 14 лет расчет количества глюкозы осуществляется 1.75 г на один кг веса.

Расшифровкой результатов анализа занимается эндокринолог. Показатель углеводов до приема раствора должен соответствовать норме или быть ниже. В том случае, если значение толерантности к глюкозе является нарушенным, то промежуточные тесты указывают на наличие в крови вены концентрации глюкозы в приделах 10.0 ммоль/л, а для плазмы из капиллярной сетки 11.1 ммоль/л. Если попрошествии двух часов результаты анализов имеют отклонение от нормы, то это говорит о том, что глюкоза не усваивается в организме.

Для организма человека опасными являются ситуации, когда уровень углеводов как завышен, так и занижен.

Последствия значительного отклонения уровня от нормы

В мужском и женском организме уровень углеводов из венозного русла и капиллярной сети может колебаться незначительно, с небольшими отклонениями.

Большинство людей знают о вреде повышенного уровня глюкозы. Но пониженному значению не уделяют должного внимания. Недостаток глюкозы может быть еще более опасным, чем ее избыток.

Падение ниже допустимого способно спровоцировать в организме целую цепь изменений. Для того чтобы контролировать эти физиологические данные следует регулярно проходит обследование. Особенно это относится к людям, у которых наблюдается регулярное возникновение гипогликемических состояний.

В медицине выделяются следующие критические значения содержания углеводов и их последствия:

1. Понижение менее 3.5 – появляется повышенная потливость, учащаются сердечные сокращения, больной чувствует голод и вялость.
2. Снижение от 2.8 до 2 – у больного наблюдается расстройства в поведении и умственной деятельности.
3. При падении до 2-1.7 – появляются серьезные нарушения в работе центральной нервной системы, выявляется сильная усталость и вялость, в некоторых случаях больной не способен назвать собственное имя.
4. В случае снижения до 1 у пациента появляются судороги и нарушения регистрируются в работе мозга на энцефалограмме. Длительное нахождение в таком состоянии приводит к коме.
5. Если чем 1 - происходят необратимые процессы в головном мозге, человек погибает.

Повышение сахара является не менее опасным, чем его снижение. При повышенном содержании глюкозы:

• больной ощущает усталость, слабость во всем организме и головную боль;
• у человека выявляется снижение веса, несмотря на наличие хорошего аппетита;
• появляются частые позывы к мочеиспусканию;
• регистрируется формирование на теле гнойничков, которые тяжело заживают;
• снижаются функциональные способности иммунной системы;
• возникает ;
• у мужчин среднего возраста регистрируется расстройство потенции;
• наблюдается ухудшение зрения.

Следует помнить, что повышенное содержание в организме может являться следствием проведения медикаментозной терапии с применением никотиновой кислоты, мочегонных средств, кортикостероидных препаратов и Индометацина.

Если после взятия крови из пальца или вены регистрируется отклонение от нормальных значений в ту или иную сторону, то следует незамедлительно обратиться за консультацией к эндокринологу. Врач после проведения обследования и получения результатов анализов определяет возможные причины возникновения отклонения и при необходимости назначает адекватный и своевременный курс медикаментозной терапии, направленный на восстановление баланса в организме больного.

Непосредственным объектом гематологии как науки является система крови, которая состоит из кроветворных органов (костный мозг, селезенка, лимфатические узлы) и периферической крови. Если раньше круг деятельности гематолога ограничивался изучением морфологии клеточного состава периферической крови, костного мозга и лимфатических узлов, то в настоящее время сюда входит и исследование иммунной системы организма.

Кровь представляет собой жидкость сложного состава - плазму, в которой суспензированы форменные элементы: эритроциты (Red Blood Cells, RBCs - красные кровяные клетки), лейкоциты (White Blood Cells, WBCs - белые кровяные клетки) и тромбоциты (Platelets, Pits). При коагуляции крови после отделения сгустка остается жидкость, которая называется сывороткой. В периферической крови в норме содержатся зрелые клеточные элементы. Незрелые предшественники находятся в органе кроветворения - красном костном мозге.

Из методов количественного и качественного исследования форменных элементов крови наиболее распространен общеклинический анализ крови: определение концентрации гемоглобина, цветового показателя, содержания эритроцитов, лейкоцитов, лейкоцитарной формулы, описание особенностей морфологической картины клеток крови, оценка скорости оседания эритроцитов (СОЭ). При наличии изменений данных показателей дополнительно определяют количество ретикулоцитов и тромбоцитов. Эти исследования проводят всем стационарным больным. В амбулаторных условиях нередко ограничиваются недостаточно информативным определением «тройки»: количества гемоглобина, лейкоцитов и СОЭ. Клинический анализ периферической крови является одним из важнейших лабораторных тестов и иногда дает возможность сразу определить направление диагностического поиска (например, при появлении бластов в формуле крови или наличии гиперлейкоцитоза с абсолютным лимфоцитозом, тельцами Гумпрехта). На основании клинического анализа крови трудно судить о гемопоэзе в целом. Более полное представление дает параллельное изучение костного мозга (цитологическое, цитохимическое и цитогенетическое).

При патологических состояниях гематологические изменения варьируют в зависимости от тяжести процесса, стадии заболевания и наличия осложнений, сопутствующей патологии, проводимой терапии. Необходимо учитывать, что изменения лабораторных показателей (например, количества лейкоцитов и формулы крови) наблюдаются не только при патологических состояниях, но и при проведении некоторых диагностических процедур, изменении физиологического статуса организма (смена климата, время суток, возраст, физические нагрузки, гормональный фон).

Взятие и обработка крови

Исследование рекомендуется проводить утром натощак или через 1 ч после легкого завтрака. Исследуют, главным образом, капиллярную кровь, можно использовать венозную кровь (также взятую натощак). Не рекомендуется брать кровь после физической и умственной нагрузки, применения лекарственных препаратов, особенно при внутривенном или внутримышечном их введении, воздействия рентгеновских лучей и после физиотерапевтических процедур. В экстренных случаях этими правилами пренебрегают. Повторные исследования целесообразно производить в одни и те же часы, так как морфологический состав крови подвержен колебаниям на протяжении суток.

Все необходимые исследования, а также приготовление мазков крови следует выполнять как можно скорее. При невозможности быстрого проведения исследований образец крови, тщательно перемешанной с антикоагулянтом, помещают в холодильник при 4 °С. Перед взятием крови из контейнера или пробирки ее осторожно перемешивают неоднократным перевертыванием для исключения возможных погрешностей.

Реактивы:

1. 5% раствор цитрата натрия (C 6 H 5 O 7 Na 3 · 5H 2 O); хранится 1-2 нед, помутневший раствор к употреблению негоден;
2. Трансформирующий раствор (ацетонциангидрин - 0,5 мг; калий железосинеродистый (красная кровяная соль, K 3 (Fe(CN) 6) - 0,2 г; натрия гидрокарбонат (NaHCO 3) - 1 г; дистиллированная вода - до 1 л;
3. Изотонический раствор (0,9%) натрия хлорида или реактив Гайема: хлорид ртути II (HgCl 2) - 0,5 г; сульфат натрия (Na 2 SO 4) - 5 г; натрия хлорид (NaCl) - 1 г; вода дистиллированная - до 200 мл);
4. 3-5% раствор уксусной кислоты;
5. 14% раствор сульфата магния;
6. 6% раствор ЭДТА;
7. 1% раствор оксалата аммония (NH 4 C 2 O 4);
8. Спирт этиловый;
9. 3-5% спиртовой раствор йода.

Оборудование:

1. копья для прокола пальца (одноразовые);
2. пробирки;
3. пипетки вместимостью 0,02 мл стерильные;
4. капилляры от аппарата Панченкова стерильные;
5. предметные стекла;
6. шлифованные стекла.

Взятие капиллярной крови

Капиллярную кровь получают с помощью прокола: 1) мочки уха; 2) мякоти концевых фаланг пальцев рук; 3) у новорожденных и детей раннего возраста - подошвенной поверхности пятки или большого пальца ноги. Прокол должен быть глубиной около 3-4 мм. Не следует брать кровь из воспаленных или поврежденных участков. Если место предполагаемого прокола холодное или цианотичное, его предварительно согревают массированием или погружением конечности в теплую воду, иначе могут быть получены ошибочные результаты. Кожу обрабатывают 70% этиловым спиртом или специальным антисептическим раствором, дают высохнуть и затем прокалывают. Первую каплю снимают ватным тампоном, выдавливать кровь не рекомендуется. Чтобы получить достаточное количество крови, осуществляют легкий нажим с помощью стерильного тампона.

Для определения числа эритроцитов и лейкоцитов используется пробирочная (безмеланжерная) методика Н. М. Николаева (1954).

Для подсчета числа эритроцитов берут 0,02 мл крови и разводят в пробирке 4 мл 0,9% раствора натрия хлорида (разведение в 200 раз).

Для подсчета количества лейкоцитов также берут 0,02 мл крови и разводят в пробирке 0,4 мл 3-5% раствора уксусной кислоты, подкрашенного несколькими каплями раствора метиленового синего (для окраски ядер лейкоцитов). Тщательно перемешивают. Уксусная кислота гемолизирует эритроциты.

Для определения концентрации гемоглобина в сухую стерильную пипетку набирают 0,02 мл крови и разводят ее в пробирке с трансформирующим раствором (5 мл), перемешивают.

Для определения СОЭ в капилляр от аппарата Панченкова, промытый 5% раствором цитрата натрия, набирают кровь до метки (100 делений) и тщательно выдувают ее в пробирку с подготовленным 5% раствором цитрата натрия (соотношение крови и реактива 4:1), пробирку встряхивают. Время взятия крови записывают.

Для подсчета количества ретикулоцитов можно проводить окраску препарата непосредственно на стекле или в пробирке. Используют унифицированную методику подсчета количества ретикулоцитов. На подготовленное предметное стекло с одним из красителей (бриллиантовый крезиловый синий, азур I или II) наносят каплю крови, готовят тонкий мазок. Для окраски в пробирке в рабочий раствор бриллиантового крезилового синего (5 капель) добавляют 0,04 мл крови, тщательно, но осторожно перемешивают и через 30 мин готовят тонкие мазки.

Количество тромбоцитов на 1000 эритроцитов можно определять унифицированной методикой Фонио в окрашенных мазках крови. Капилляром Панченкова берут реактив (14% раствор сульфата магния или 6% раствор ЭДТА) до метки «75» и смешивают с кровью, взятой тем же капилляром, до метки «0». Перемешивают, готовят мазки. Фиксируют и окрашивают по Романовскому–Гимзе. Существует также унифицированная методика подсчета тромбоцитов в счетной камере. К 4 мл 1 % раствора оксалата аммония добавляют 0,02 мл крови, перемешивают, оставляют на 25-30 мин для гемолиза эритроцитов.

Для исследования лейкоцитарной формулы, морфологии эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов готовят препараты. Наносят каплю крови на сухое обезжиренное предметное стекло и быстро готовят тонкие мазки с помощью шлифованного стекла.

В настоящее время в связи с появлением гематологических автоматических анализаторов стали шире использовать для общего клинического анализа венозную кровь, которую берут либо в специальные пластиковые пробирки одноразового пользования с порошком ЭДТА, либо в стеклянные пробирки с другим антикоагулянтом. Сразу после взятия крови пробирку закрывают пробкой и несколько раз тщательно перемешивают кровь, не взбалтывая, что позволяет избежать образования сгустков, наличие которых искажает результаты.

Взятие венозной крови

Пациенту объясняют характер предстоящей процедуры. Осматривают его вены, при необходимости используя жгут. Берут шприц емкостью, соответствующей количеству крови, необходимому для анализа. Игла должна быть меньше 22 размера, от 2,5 до 4 см длиной. На плечо накладывают «венозный» жгут. Вместо жгута можно использовать манжету сфигмоманометра под давлением, средним между систолическим и диастолическим у данного пациента. Пациента просят сжать и разжать несколько раз кулак. Тщательно обрабатывают кожу в месте предполагаемого забора (обычно локтевая вена на внутренней поверхности локтевого сгиба) 70 % этиловым спиртом или другим антисептическим раствором и пунктируют вену. Иногда в сосуд сразу попасть не удается, в таком случае прокалывается кожа вблизи вены, а затем пунктируется вена. В тот момент, когда игла попадает в вену, кровь поступает в шприц. Если кровь не получена, иглу подтягивают на себя, и кровь обычно начинает течь в шприц. Жгут ослабляют и просят пациента разжать кулак. После процедуры, легко нажимая кусочком стерильной ваты, вытирают место укола. Прежде чем отпустить пациента, убеждаются, что кровотечение прекратилось. У грудных детей кровь может быть получена из бедренной или наружной яремной вены. Кровь из шприца аккуратно сливают в пробирку или специальный контейнер, предварительно сняв иглу.

В последнее время для забора как венозной, так и капиллярной крови широко используются одноразовые системы, поставляемые на рынок различными фирмами. В частности на российском рынке представлены системы взятия венозной крови Vacuette производства компании Greiner Bioone (Австрия). Всем хорошо известны современные требования к забору крови из вены. Выполняя эти требования, часто приходится сталкиваться с целым рядом сложностей: это и тромбирование крови в игле, и гемолиз, вызванный двукратным прохождением крови через иглу. При необходимости заполнить кровью несколько пробирок увеличивается длительность забора крови. Если планируется определение факторов свертывания, очень важно точно соблюдать соотношение кровь-антикоагулянт, что не всегда удается. Различные неприятности случаются также и при доставке пробирок с кровью в лабораторию: часто приходится сталкиваться с тем, что пробирка разбилась, кровь разлилась или часть крови впиталась в ватный тампон, которым закрыта пробирка. Кроме того, несмотря на то, что персонал работает в перчатках, кровь пациента может попасть на руки.

Эти и многие другие проблемы легко решаются при использовании вакуумных систем для взятия крови Vacuette. Система обеспечивает полную безопасность медицинского персонала при работе в момент взятия крови, так как полностью исключается контакт крови пациента с окружающей средой. Процедура взятия крови занимает всего 30 секунд и безболезненна для пациента. Система обеспечивает максимально точное соблюдение правил преаналитического этапа лабораторных исследований, существенно сокращая вероятность ошибочного результата. Разнообразие компонентов системы позволяет удобно и безопасно взять кровь для любых видов лабораторного анализа. Vacuette® - полностью «закрытая» вакуумная система для взятия крови из вены).

Система Vacuette® аналогична обычному шприцу, но вместо поршня используется перепад давлений, возникающий благодаря тому, что в пробирке создан вакуум. Система максимально удобна в обращении и обеспечивает полную защиту медицинского персонала от возможного заражения.

Кровь, взятая для получения сыворотки или плазмы, центрифугируется непосредственно в пробирке. Возможно также использование пробирок с гелем, который после центрифугирования отделяет сыворотку (плазму) от сгустка, полностью препятствуя обратному смешению.

Осложнения при взятии крови

Ранние осложнения : гематома и коллапс (обморок).

Избежать гематомы можно созданием в месте прокола адекватного давления, наложив тугую повязку.

В случае обморока пациента необходимо уложить на кушетку, дать понюхать раствор нашатырного спирта и вызвать врача.

Поздние локальные осложнения : тромбоз вены, иногда может развиться тромбофлебит.

Поздние общие осложнения : заражение вирусами гепатитов В и С, ВИЧ через инфицированную иглу или шприц.

Профилактика осложнений :

• если кровотечение из места прокола трудно остановить, этому участку тела придают возвышенное положение и накладывают давящую повязку. Пациента наблюдают до тех пор, пока кровотечение не прекратится;
• кровь для любых лабораторных исследований не рекомендуется брать из той конечности, в которую переливают кровь;
• у больных лейкозами, агранулоцитозом и пациентов с пониженной сопротивляемостью организма (иммунодефициты) прокол пальца или мочки уха может вызвать инфекцию скорее, чем венепункция. Если для исследования все же требуется капиллярная кровь, кожу необходимо особенно тщательно обрабатывать дезинфицирующим агентом. Этиловый спирт не является средством выбора, лучше использовать специальные антисептические растворы.

Это самый востребованный анализ, назначают его очень часто. Связано это с тем, что при относительно простой методике проведения анализов, можно получить, в короткие сроки, достаточно информативный ответ.

Для получения правильного результата необходимо подготовиться психологически, к боли, которая сопровождает каждую сдачу анализа.

На сколько больно, когда берут кровь из пальца?

Переносится каждым человеком по-разному. И на сколько больно будет во время анализа, зависит от многих факторов:

• От того, насколько человек, который сдает анализ переносит боль. Прокол пальца достаточно болезненный, но происходит это очень быстро – в течении секунды, эту боль можно сравнить с порезом пальца.

• Насколько он психологически подготовлен – когда анализ сдается первый раз, то не зная, как все пройдет, можно сильно испугаться и тогда боль покажется очень сильной;
• От профессионализма медсестры, которая будет брать анализ крови из пальца.

Как проходит сдача анализа?

Процедура анализа очень проста и не требует никакой особой подготовки. Но по рекомендации врачей – кровь сдается натощак, с утра, до приема медикаментов или прохождения других процедур, при которых какое-либо действующее вещество может попасть в кровь и сделать результат анализа недействительным или повлиять на какие-либо параметры.

Анализ берут из пальца на левой руке. Перед тем, как проколоть палец одноразовой иглой – скарификатором, подушечку пальца протирают спиртом и делают прокол, примерно глубиной 2 мм. Кровь из пальца расскажет о количестве различных ее компонентов: лейкоцитов, эритроцитов, гемоглобина и других.

На сколько больно, когда берут кровь из вены?

Очень много людей совершенно спокойно относятся к сдаче крови из вены. Но есть и те, кто со страхом ожидает начала процедуры.

Обычно тревогу вызывают следующие моменты:

• Боль при прокалывании кожи – как правило, это люди, которые боятся любых уколов;
• Страх перед занесением инфекции;
• «Плохие вены» — человек, у которого сложно найти вену, не любит сдавать этот анализ из-за того, что приходиться прокалывать кожу несколько раз и в разных местах: на сгибе локтя, запястье, предплечье или голени.

И все же основная масса людей сходится во мнении, что брать кровь из вены не больно, из пальца гораздо больнее.

Как проводится процедура?

От того, насколько правильно была проведена процедура, зависит достоверность результатов и дальнейшее лечение. Ошибки при взятии биоматериала могут привести к развитию осложнений:

• Прокол сосуда с образованием обширной гематомы с распространением на окружающие ткани;
• – игла раздражает стенки сосудов и нервные окончания, может произойти спазм, который снижает отток крови. Это может привести к развитию тромбофлебита;
• Занесению инфекции – может развиться .

Процедура проведения анализа – не сложная, если анализ берет опытная медсестра. Для забора крови берут одноразовый шприц или специальные вакуумные пробирки, которые исключают контакт взятой крови с одеждой или руками медсестры. Для правильного проведения анализа необходимо:

• Приготовить емкость для сбора анализа;
• Поместить под локоть валик и зафиксировать руку ладонью вверх;
• Наложить жгут на среднюю часть плеча;
• Ватным тампоном, смоченным в спирте, тщательно обработать локтевой сгиб;
• Попросить пациента поработать кулаком, чтобы наполнить вены кровью и затем сжать кулак;
• Сделать забор крови.

Иногда, из-за того, что пациент часто сдает кровь из вены или анатомических особенностей, не удается сразу попасть в вену. Тогда сбор биологического материала проведут на другом участке тела, где вены лучше видно.

ВИДЕО Техника взятия венозной крови

Что нужно делать после того, как взяли кровь из вены, чтобы не было синяка?

После взятия у одних людей остается лишь маленькая ранка в месте прокола, а у других – огромный синяк. Происходит это из-за попадания венозной крови под кожу. Случится это может из-за прокола вены или, когда пациент быстро разжал руку после окончания сдачи крови.

Для того, чтобы избежать появления синяка необходимо не допускать попадание крови под кожу. Когда медсестра закончила взятие крови и положила ватный тампон на место прокола, необходимо держать руку в согнутом состоянии, пока кровь полностью не остановится, и ранка не затянется. Гематома, также, может появиться из-за слишком тонкой кожи или глубоко расположенных вен. В случае появления синяка лучше не задействовать руку для поднятия тяжести или других действий, при которых требуется сильное напряжение или нагрузка.

На какие анализы берут кровь из пальца, а на какие из вены?

Анализ крови из пальца назначается в следующих случаях:

• При взятии – для определения клеточного состава: подсчета эритроцитов, тромбоцитов и лейкоцитов. Определения их параметров, лейкоцитарной формулы, измерения уровня гемоглобина;
• Для определения ;
• Для проведения экспресс-анализа на определение .

Анализ крови из вены берут если надо:

• Получить более подробный общий анализ – при взятии подобного анализа из пальца, не удается так точно определить все необходимые параметры;
• Исследовать иммунный состав организма – по этому анализу можно определить наличие и стадию инфекционного заболевания;
• Определить

Утверждаю

Заместитель Министра
здравоохранения и социального
развития Российской Федерации
Р.А.ХАЛЬФИН

Список сокращений [показать] .

Введение

В эру использования современных технологий автоматизированного анализа крови стало реальным предоставлять значительно больше клинической информации о состоянии кроветворной системы и реагировании ее на различные внешние и внутренние факторы. Анализ результатов исследования крови составляет неотъемлемое звено в диагностическом процессе и последующем мониторинге на фоне проводимой терапии.

Высокотехнологические гематологические анализаторы способны измерять более 32 параметров крови, осуществлять полный дифференцированный подсчет лейкоцитов по 5-ти основным популяциям: нейтрофилы, эозинофилы, базофилы, моноциты и лимфоциты, что делает возможным в случае отсутствия от референсных значений этих показателей не проводить ручной подсчет лейкоцитарной формулы.

Гематологические анализаторы имеют систему обозначения - флаги или "сигналы тревоги" - указывающую на отклонение параметров от установленных границ. Они могут касаться как увеличения или уменьшения количества тех или иных клеток, так и изменения их функционального состояния, которое отражается на характеристиках измеряемых прибором клеток. Во всех этих случаях необходим строгий визуальный контроль окрашенных препаратов с соответствующими комментариями.

Несмотря на все достоинства, даже самые современные гематологические анализаторы обладают некоторыми ограничениями, которые касаются точной морфологической оценки патологических клеток (например, при лейкозах), и не в состоянии полностью заменить световую микроскопию.

ПРЕАНАЛИТИЧЕСКИЙ ЭТАП ГЕМАТОЛОГИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЙ

Контроль преаналитических факторов в гематологических исследованиях является ключевым для обеспечения качественных результатов тестов. Отклонения от стандартов при взятии пробы, транспортировке и хранении образца, интерферирующие вещества, а также факторы, связанные с пациентом, могут привести к неверным или неточным результатам анализов и, следовательно, к постановке ошибочного диагноза. До 70% лабораторных ошибок связаны именно с преаналитическим этапом исследования крови. За счет снижения числа ошибок на любом этапе преаналитической подготовки можно существенно улучшить качество гематологических анализов, снизить количество повторных проб, сократить расходы рабочего времени и средств на обследование пациентов.

Снижение до минимума возможных ошибок и обеспечение высокого качества гематологических исследований возможно за счет стандартизации преаналитического и аналитического этапов работы.

Взятие крови

На точность и правильность результатов оказывает влияние техника взятия крови, используемые при этом инструменты (иглы, скарификаторы и др.), а также пробирки, в которые берется, а в последующем хранится и транспортируется кровь.

• Кровь для клинического анализа берут у пациента из пальца, вены или из мочки уха, у новорожденных - из пятки.
• Кровь следует брать натощак (после примерно 12 часов голодания, воздержания от приема алкоголя и курения), между 7 и 9 часами утра, при минимальной физической активности непосредственно перед взятием (в течение 20 - 30 мин.), в положении пациента лежа или сидя.
• Взятие материала следует проводить в резиновых перчатках, соблюдая правила асептики.

Венозная кровь. Венозная кровь считается лучшим материалом для клинического исследования крови. При известной стандартизации процессов взятия, хранения, транспортировки венозной крови удается добиться минимальной травматизации и активации клеток, примеси тканевой жидкости, при этом всегда имеется возможность повторить и/или расширить анализ, например, добавив исследование ретикулоцитов.

Достоверность и точность гематологических исследований, проводимых из венозной крови, во многом определяется техникой взятия крови.

Подготовка пациента к взятию крови из вены включает несколько этапов. Место венепункции нужно продезинфицировать марлевой салфеткой или специальной безворсовой салфеткой, смоченной 70° спиртом, и подождать до полного высыхания антисептика (30-60 секунд). Применение ватных тампонов и других волокнистых материалов подобного рода может привести к засорению волокнами счетной и гемоглобиновой камер, что влечет снижение точности и воспроизводимости измерения. Не рекомендуется использовать 96° спирт, так как он дубит кожу, поры кожи закрываются, и стерилизация может быть неполной.

Не рекомендуется вытирать и обдувать место прокола, пальпировать вену после обработки. Рука пациента должна покоиться на твердой поверхности, быть вытянута и наклонена немного вниз так, чтобы плечо и предплечье образовывали прямую линию. Необходимо следить, чтобы в момент взятия крови кулак пациента был разжат. Жгут следует накладывать не более чем на 1-2 минуты, тем самым обеспечивается минимальный стаз, при котором клетки крови не повреждаются. Игла должна быть достаточно большого диаметра и иметь короткий срез, чтобы не травмировать противоположную стенку вены во избежание тромбоза. После взятия крови необходимо приложить сухую стерильную салфетку к месту венепункции, а затем наложить давящую повязку на руку или бактерицидный пластырь.

Кровь для гематологических исследований должна поступать свободным током непосредственно в пробирку, содержащую антикоагулянт К x ЭДТА. Взятие крови шприцом без антикоагулянта с последующим переливанием в пробирку нежелательно из-за формирования микросгустков и гемолиза. При взятии капиллярной крови необходимо использовать специальные пробирки с ЭДТА для капиллярной крови.

Рационально применение пробирок для взятия венозной крови небольшого объема (4-5 мл) диаметром 13 и высотой пробирки 75 мм. Взятие венозной крови облегчается применением закрытых вакуумных систем, например, BD Vacutainer (R) производства компании Becton Dickinson. Под влиянием вакуума кровь из вены быстро поступает в пробирку (рис. 1 - не приводится), что упрощает процедуру взятия и сокращает время наложения жгута.

Вакуумная система состоит из трех основных элементов, соединяющихся между собой в процессе взятия крови: стерильной одноразовой пробирки с крышкой и дозированным содержанием вакуума, стерильной одноразовой двусторонней иглы, закрытой с обеих сторон защитными колпачками, и одно- или многоразового иглодержателя (рис. 2 - не приводится). Пробирки, входящие в закрытую вакуумную систему, содержат различные добавки и антикоагулянты, в том числе для проведения гематологических исследований. Метод взятия крови с помощью закрытых вакуумных систем имеет ряд преимуществ, основными из которых являются обеспечение высокого качества пробы и предотвращение любого контакта с кровью пациента, а значит, обеспечение безопасности медицинского персонала и других пациентов за счет существенного снижения риска заражения гемоконтактными инфекциями.

ЭДТА (К 2 ЭДТА или К 3 ЭДТА) - предпочтительный антикоагулянт при подсчете форменных элементов крови с использованием автоматических гематологических анализаторов. Использование Na 2 ЭДТА не рекомендуется вследствие его плохой растворимости в крови. При использовании рекомендованных концентраций K 2 EDTA и K 3 EDTA и при проведении анализа на гематологических анализаторах в пределах от 1 до 4 ч после взятия крови существенных различий результатов между образцами, взятыми с этими двумя антикоагулянтами, не зафиксировано. Не следует использовать пробирки с выпаренным раствором ЭДТА, приготовленные в условиях лаборатории. При испарении на дне пробирки образуются крупные кристаллы ЭДТА, которые очень медленно растворяются в крови. Это может приводить к образованию фибриновых нитей в верхней части пробы крови. Многие компании выпускают пробирки с сухим напылением ЭДТА (особенно для капиллярной крови). Особенности технологии приготовления этих пробирок приводят к равномерному распределению ЭДТА по стенкам.

У некоторых пациентов может наблюдаться небольшая спонтанная агрегация тромбоцитов или реже так называемая ЭДТА-зависимая псевдотромбоцитопения (иммунного характера), причем эти явления прогрессируют по мере увеличения времени, прошедшего после взятия крови. У таких лиц точный подсчет числа эритроцитов может быть осуществлен при взятии крови с цитратом в качестве антикоагулянта.

Следует помнить, что применение в качестве антикоагулянтов гепарина или цитрата натрия сопровождается структурными изменениями клеток и поэтому не рекомендуется для использования как при автоматизированном, так и морфологическом исследовании крови.

Цитрат натрия в основном используется для определения скорости оседания эритроцитов (СОЭ) по методу Вестергрена или Панченкова. Для этого венозная кровь набирается в пробирки с 3,8% цитратом натрия в соотношении 4:1. С этой же целью может использоваться венозная кровь, взятая с ЭДТА (1,5 мг/мл) и затем разведенная цитратом натрия в соотношении 4:1. Сразу после заполнения пробирки кровью до указанного на ней объема пробу следует осторожно перемешать плавным переворачиванием и вращением пробирки в течение не менее 2 минут (пробирку с ЭДТА 8 - 10 раз, пробирку с цитратом натрия для определения СОЭ - также 8 - 10 раз) (рис. 3 - не приводится). Пробирки нельзя встряхивать - это может вызвать пенообразование и гемолиз, а также привести к механическому лизису эритроцитов.

Для кратковременного хранения и перемешивания проб крови существуют различные приспособления. Одним из наиболее удобных приспособлений является Ротамикс RM-1 фирмы ELMI (Латвия), который позволяет подобрать наиболее оптимальный режим перемешивания проб крови (рис. 4 - не приводится).

Капиллярная кровь. Для гематологических исследований капиллярную кровь рекомендуется брать в следующих случаях:

• при ожогах, занимающих большую площадь поверхности тела пациента;
• при выраженном ожирении пациента;
• при установленной склонности к венозному тромбозу;
• у новорожденных.

Для взятия пробы капиллярной крови используют стерильные скарификаторы-копья одноразового применения (например, BD Genie™ фирмы "Becton Dickinson", фирмы "Гем", ЗАО Медикон ЛТД и др.) или лазерные перфораторы. Между объемом получаемой крови и глубиной прокола имеется прямая зависимость. В связи с этим скарификатор должен выбираться в зависимости от места прокола и количества крови, необходимого для выполнения различных исследований. С этой целью фирма BD выпускает скарификаторы BD Genie™ с лезвиями разных размеров (рис. 5 - не приводится).

Пункция пальца не должна проводиться у младенцев, так как это может привести к повреждению кости. У новорожденных кровь берется из пятки, при этом рекомендуется использовать специальные атравматичные скарификаторы BD Quickheel™ производства той же фирмы (рис. 6 - не приводится). Перед проколом кожа пальца пациента обрабатывается стерильным тампоном, смоченным 70° спиртом. Кожа в месте прокола должна быть сухой, розовой и теплой.

Место пункции необходимо просушить естественным способом для удаления остатков спирта, поскольку он может вызвать гемолиз.

Применение ватных тампонов и других волокнистых материалов не рекомендовано, поскольку это приводит к засорению волокнами счетных и гемоглобиновой камер. В результате точность и воспроизводимость измерения падает.

Первую каплю крови, полученную после прокола кожи, следует удалить тампоном, поскольку эта капля содержит примесь тканевой жидкости. Капли крови должны свободно вытекать, нельзя давить на палец и массировать зону вокруг прокола, так как при этом в кровь попадает тканевая жидкость, что существенно искажает результаты исследования. После взятия крови к раневой поверхности прикладывается новый стерильный тампон, смоченный 70° спиртом. Тампон следует удерживать, пока не прекратится кровотечение.

После прокола капиллярная кровь помещается в специальный микрокапилляр или специальные пластиковые пробирки одноразового пользования, обработанные антикоагулянтом К 2 ЭДТА (фирмы "Deltalab", "Sarstedt" , BD Microtainer (R) и др.) (рис. 7, 8 - не приводятся).

При прикосновении края пробирки к месту пункции капли крови начинают стекать в нее под действием капиллярного эффекта. После завершения сбора крови пробирку следует плотно закрыть. Необходимым условием для обеспечения качественной пробы является ее обязательное немедленное перемешивание с антикоагулянтом осторожным переворачиванием пробирки до 10 раз. В случае последовательного взятия капиллярной крови в несколько микропробирок необходимо соблюдать определенный порядок их заполнения. Последовательность взятия крови такова: в первую очередь заполняются пробирки с ЭДТА, затем с другими реактивами и в последнюю очередь заполняются пробирки для исследования сыворотки крови.

• При взятии крови в пробирку с антикоагулянтом не допускается стекание крови по коже пальца, стенке пробирки и любой другой поверхности, так как мгновенно происходит контактная активация прогресса свертывания.
• Кровь самотеком из прокола должна попадать прямо в антикоагулянт, перемешиваясь с ним.
• Нельзя выдавливать кровь из пальца во избежание спонтанной агрегации тромбоцитов и попадания в пробу большого количества межтканевой жидкости (тканевого тромбопластина).

Следует отметить, что при взятии капиллярной крови возможен ряд особенностей, которые бывает весьма трудно стандартизировать:

• физиологические - холодные, цианотичные пальцы;
• методические - малый объем исследуемой крови и в связи с этим необходимость разведения образца для анализа на гематологическом анализаторе и др.

Все это приводит к значительным разбросам в получаемых результатах и, как следствие, к необходимости повторных исследований для уточнения результата.

Доставка, хранение и подготовка проб к исследованию

Для обеспечения качественного результата исследований нужно четко контролировать время и условия хранения проб до выполнения анализа.

• Автоматизированное исследование крови необходимо проводить в промежутке 0-5 мин. или через 1 час и позже после взятия крови. В промежутке 5 мин. - 1 час происходит временная агрегация тромбоцитов, что может привести к их ложному снижению в пробе крови.
• Непосредственно после взятия крови исключается возможность спонтанной агрегации тромбоцитов, примерно 25 мин. необходимо для адаптации тромбоцитов к антикоагулянту. При анализе, проведенном позже чем через 6-8 часов после взятия образца, уменьшается достоверность результатов. Более продолжительное хранение крови не рекомендуется, т.к. изменяются некоторые характеристики клеток (сопротивляемость клеточной мембраны), снижается объем лейкоцитов, повышается объем эритроцитов, что в конечном итоге приводит к ошибочным результатам измерения и неправильной интерпретации результатов. Только концентрация гемоглобина и количество тромбоцитов остаются стабильными в течение суток хранения крови.
• Кровь нельзя замораживать. Капиллярную кровь с ЭДТА следует хранить при комнатной температуре и анализировать в течение 4 часов после взятия.
• При необходимости проведения отсроченного анализа (транспортировка на отдаленные расстояния, техническая неполадка прибора и т.д.) пробы крови хранят в холодильнике (4-8 °С) и исследуют в течение 24 часов. Однако при этом следует учитывать, что происходит набухание клеток и изменение параметров, связанных с их объемом. У практически здоровых людей эти изменения не носят критического характера и не сказываются на количественных параметрах, но при наличии патологических клеток последние могут изменяться или даже разрушаться в течение нескольких часов с момента взятия крови.
• Непосредственно перед исследованием кровь должна быть тщательно перемешана в течение нескольких минут для разведения антикоагулянта и равномерного распределения форменных элементов в плазме. Длительное постоянное перемешивание образцов на ротомиксе до момента их исследований не рекомендуется вследствие возможного травмирования и распада патологических клеток.
• Исследование крови на приборе проводится при комнатной температуре. Кровь, хранившуюся в холодильнике, необходимо вначале согреть до комнатной температуры, так как при низкой температуре увеличивается вязкость, а форменные элементы имеют тенденцию к склеиванию, что, в свою очередь, приводит к нарушению перемешивания и неполному лизису. Исследование холодной крови может быть причиной появления "сигналов тревоги" вследствие компрессии лейкоцитарной гистограммы.
• Приготовление мазков крови рекомендуется делать не позднее 1-2 часов после взятия крови.

При выполнении гематологических исследований на значительном удалении от места взятия крови неизбежно возникают проблемы, связанные с неблагоприятными условиями транспортировки. Тряска, вибрация, постоянное перемешивание, нарушения температурного режима, возможные проливы и загрязнения проб могут оказывать существенное влияние на качество анализов. Для устранения этих причин при перевозках пробирок с кровью рекомендуется использовать герметично закрытые пластиковые пробирки (BD Vacutainer (R) производства компании "Becton Dickinson", Deltalab, Sarstedt) и специальные транспортные изотермические контейнеры (фирма "Гем").

Влияние преаналитических факторов, зависящих от пациента

На результаты гематологических исследований могут влиять факторы, связанные с индивидуальными особенностями и физиологическим состоянием организма пациента. Изменения клеточного состава периферической крови наблюдаются не только при различных заболеваниях, они также зависят от возраста, пола, диеты, курения и употребления алкоголя, менструального цикла, беременности, физической нагрузки, эмоционального состояния и психического стресса, циркадных и сезонных ритмов; климатических и метеорологических условий; положения пациента в момент взятия крови; приема фармакологических препаратов и др. Так, например, число эритроцитов и концентрация гемоглобина у новорожденных выше, чем у взрослых. С увеличением высоты над уровнем моря значительное повышение наблюдается для гематокрита и гемоглобина (до 8% на высоте 1400 м). Физические упражнения могут приводить к существенным изменениям числа лейкоцитов, обусловленным гормональными сдвигами. У больных при переходе из положения лежа в положение стоя показатели гемоглобина и число лейкоцитов могут увеличиваться на 6-8%, а показатели гематокрита и число эритроцитов возрастать на 15-18%. Этот эффект обусловлен переходом жидкости из сосудистого русла в ткани в результате повышения гидростатического давления. Выраженная диарея и рвота могут приводить к значительной дегидратации и гемоконцентрации. После регидратации наблюдается снижение гемоглобина и гематокрита, что может быть ошибочно принято за кровопотерю.

Для устранения или сведения к минимуму влияния этих факторов кровь для повторных анализов необходимо брать в тех же условиях, что при первом исследовании. Гематологические анализаторы. Интерпретация анализа крови. Методические рекомендации от 21 марта 2007 г. N 2050-РХ Преаналитический этап гематологических исследований Автоматизированное исследование клеток крови Основные параметры автоматизированного анализа крови и факторы, влияющие на их значения Интерпретация результатов автоматизированного гематологического анализа Контроль качества на гематологических анализаторах

Основная литература [показать]

1. Долгов В.В., Луговская С.А., Морозова В.Т., Почтарь М.Е. // Лабораторная диагностика анемий. Тверь, Губернская медицина, 2001.
2. Козинец Г.И., Макаров В.А. (Ред.) // Исследование системы крови в клинической практике. М., Триада-Х, 1997.
3. Козинец Г.И., Погорелов В.М., Шмаров Д.А. и др. // Клетки крови - современные технологии их анализа. М, "Триада-Фарм", 2002, с. 4 - 27.
4. Г.И. Козинец, В.М. Погорелов, О.А. Дягилева, И.Н. Наумова. // Кровь. Клинический анализ. Диагностика анемий и лейкозов. Интерпретация результатов. М., Медицина XXI, 2006.
5. Меньшиков В.В. (Ред.) Клиническая лабораторная аналитика. // М., т. 2, 1999.
6. Кузнецова Ю.В., Ковригина Е.С., Байдун Л.В. и др. // Использование эритроцитарных индексов и показателей обмена железа в дифференциальной диагностике микроцитарных анемий. Гематол. и трансфузиол., 2000, т. 45, N 6, с. 46 - 48.
7. Луговская С.А., Почтарь М.Е. // Гематологический атлас. М., "Триада", 2004.
8. Луговская С.А., Морозова В.Т., Почтарь М.Е., Долгов В.В. // Лабораторная гематология. М., "Триада", 2006.
9. Луговская С.А., Почтарь М.Е. // Ретикулоциты. М., 2006.
10. Матер. XIX Международного симпозиума "Technological Innovations in Laboratory Hematology", April 25 - 28, 2006.
11. Новик А.А., Богданов А.Н.. Анемии. СПб, "Нева", 2004.
12. Погорелов В.М., Козинец Г.И., Ковалева Л.Г. // Лабораторно-клиническая диагностика анемий, МИА, 2004.
13. Шиффман Ф.Д. // Патофизиология крови. М. - СПб., 2000.
14. Briggs С., Rogers R., Thompson В., Machin S. // "New Red Cell Parameters as Potential Markers of Functional Iron Deficiency". Infusion Therapy and Transfusion Medicine, 2001, v. 28, N 5, p. 249 - 308.
15. Hillman R.S., Ault K.A., Rinder H.M. // Hematology in Clinical Practice, McGrawHill, 2005.
16. Hinsmann R. // "Iron Metabolism, Iron Deficiency and Anemia". Sysmex Journal International, 2003, v. 13, N 2, p. 65 - 74.
17. Pollard Y., Watts M.J., Grant D. et al. // Use of the haemopoietic progenitor cell count of the SYSMEX SE-9500 to refine apheresis timing of peripheral blood stem cells. Br. J. Haematol, 1999, v. 106, p. 538 - 544.
18. Peng L., Jang J. Jang H. et al. // Determination peripheral stem cells by the SYSMEX SE-9500. Clin Lab Haemat., 2001, v. 23, p. 231 - 236.
19. Thomas L., Franck S., Thomas C., Messinger M. // "Clinical Utility of RET-Y in Functional Iron Deficiency. Proceedings of the Sysmex European Symposium", 2003, p. 91 - 101.
20. Torres Gomez A., Casano J., Sanchez J. at al. // "Utility of reticulocyte maturation parameters in the differential diagnosis of macrocytic anemias". Clin. Lab. Haematology, 2003, v. 25, p. 283 - 288.
21. Yu J., Leisenring W., Fritschle W. et al. // Enumeration of HPC in mobilized peripheral blood with the SYSMEX SE-9500 predicts final CD34+ cell yield in the apheresis collection. Bone Marrow Transplantant, 2000, v. 25, p. 1157 - 1164.
22. Wintrobe M.M. // Clinical Hematology - 9-th-Ed. Lea and Febiger, 1993.
23. Wang F.-S., Morikawa Т., Biwa S. et al. // Monitoring Heamatopoietic Stem and Progenitor Cells with SYSMEX Automated Haematology Analysers. Lab. Hemat., 2002, v. 8, p. 119 - 125.

Но и сложность процесса течения недуга.

О том, как именно происходит забор крови, как готовиться к сдаче анализа, и что именно обозначают полученные результаты, читайте ниже.

Кровь на проверку уровня глюкозы может быть взята как из капилляров, так и из артерий. Все этапы исследования, начиная от забора биоматериала и завершая получением результата, проводятся в лабораторных условиях.

У взрослых

Кровь на сахар у взрослых обычно берут из пальца .

Данный вариант носит общий характер, поэтому его назначают в рамках диспансеризации абсолютно всем посетителям амбулатории. Материал для проведения анализа берут, как и при , прокалывая кончик пальца.

Перед осуществлением прокола кожу обязательно дезинфицируют спиртовым составом. Однако такой вариант обследования не дает гарантии точности полученного результата. Дело в том, что состав капиллярной крови постоянно меняется.

Поэтому специалисты не смогут с точностью определить уровень содержания глюкозы и тем более взять результат обследования за основу при постановке диагноза. Если специалистам требуются более точные результаты, пациенту выдают направление на сдачу крови на сахар из вены.

Из-за забора биоматериала в условиях полной стерильности результат исследование будет максимально точным. Более того, венозная кровь не изменяет своего состава так часто, как капиллярная.

Поэтому данный способ обследования специалисты считают весьма достоверным.

Кровь при таком обследовании берут из вены, расположенной на внутренней стороне локтевого сгиба. Для проведения обследования специалистам будет достаточно 5 мл материала, которую берут из сосуда при помощи шприца.

У детей

забор крови в большинстве случаев также осуществляется из кончика пальца .

Как правило, капиллярной крови бывает достаточно для того, чтобы выявить у ребенка нарушения в углеводном обмене.

Для достоверного получения результата анализ проводят в лабораторных условиях. Однако родители могут проводить анализ и в домашних условиях, применяя .

В чем заключается разница?

Как мы уже говорили выше, забор крови из пальца не дает таких же точных результатов, как изучение материала, взятого из вены. По этой причине пациентам, страдающим СД, назначают и первый, и второй анализ.

Венозная кровь, в отличие от капиллярной, достаточно быстро изменяет свои характеристики, искажая результаты исследования.

Поэтому в случае с ней изучают не сам биоматериал, а извлеченную из него плазму.

В какой крови выше сахар: в капиллярной или венозной?

Как видите, содержание глюкозы в венозной крови будет выше, чем в капиллярной. Это обусловлено более густой консистенцией материала, а также его стабильным составом (по сравнению с капиллярной).

Подготовка к забору материала для исследования

Чтобы анализ дал максимально точный результат, к нему следует предварительно подготовиться. Выполнять какие-то сложные действия не придется.

Достаточно будет соблюдения следующих несложных манипуляций:

1. за 2 суток до прохождения исследования необходимо отказаться от , а также напитков, которые содержат ;
2. должна быть как минимум за 8 часов. Лучше если между последним приемом пищи и забором материала для исследования пройдет от 8 до 12 часов;
3. перед поездкой в лабораторию нельзя чистить зубы или пользоваться жевательной резинкой. В них также содержится , способный негативно повлиять на результаты анализа;
4. можно пить в неограниченных количествах, но только обычную или минеральную без газа;
5. не стоит сдавать анализ после активной , прохождения процедуры , рентгена или же пережитого . Перечисленные обстоятельства могут исказить результат. Поэтому в подобных случаях прохождение анализа лучше отложить на пару дней.

Чтобы результат был максимально точным, необходимо проходить обследование в одной и той же лаборатории, поскольку разные центры применяют различные методы оценки результата.

Алгоритм взятия материала для определения уровня глюкозы

При получении биоматериала в лаборатории все манипуляции выполняет врач-лаборант.

Забор крови проводится в стерильных условиях с применением одноразовых инструментов (скарификатора, пробирки, капилляра, шприца и так далее).

Перед тем как осуществить прокол кожи или сосуда, специалист дезинфицирует , обрабатывая зону спиртом.

Если осуществляется забор материала из вены, руку выше локтевого сгиба перетягивают жгутом, чтобы обеспечить максимальное давление внутри сосуда в этом месте. Кровь из пальца берут стандартным способом, прокалывая кончик пальца скарификатором.

Если вам необходимо получить кровь для проверки уровня глюкозы в домашних условиях, необходимо разложить все составляющие (глюкометр, ручку-шприц, и прочие необходимые предметы) на столе, отрегулировать глубину прокола и тщательно помыть руки с мылом.

Что касается обработки места прокола спиртом — мнения специалистов относительно данного момента расходятся. С одной стороны, спирт создает стерильные условия, а с другой — превышение дозировки спиртового раствора может испортить тестовую полоску, что исказит полученный результат.

После завершения приготовлений приложите ручку-шприц к кончику пальца (к ладони или к мочке уха) и нажмите на кнопку.

Первую каплю крови, полученную после прокола, сотрите стерильной салфеткой, а вторую — нанесите на тестовую полоску.

Если вставлять тестер в глюкометр необходимо заранее, это проделывают перед тем, как совершить прокол. Дождитесь, пока прибор выведет на экран конечный результат, и занесите полученную цифру в дневник диабетика.

Расшифровка результатов анализа: норма и отклонения

Для того чтобы оценить состояние пациента и грамотно выбрать терапевтическую стратегию (при необходимости), специалисты используют стандартные показатели нормы, отталкиваясь от которых, можно понять, насколько тяжелым является состояние здоровья человека.

Во многом показатель нормы зависит от возрастной категории пациента и типа исследования, который был применен.

Если показатель превысил 6,1 ммоль/л — ставят . При сдаче крови из вены показатель нормы примерно на 12% выше, чем при заборе крови из пальца.

То есть показатель до 6,1 ммоль/л считается нормальным, а вот превышение порога 7,0 ммоль/л является прямым доказательством развития диабета.

Цена анализа

Этот вопрос интересует каждого человека, которому был поставлен диагноз «сахарный диабет». Стоимость услуги может быть разной.

Она будет зависеть от региона расположения лаборатории, типа исследования, а также от ценовой политики учреждения.

Поэтому перед тем, как обратиться в медицинский центр, обязательно уточните стоимость того вида анализа, который необходим вам.

Видео по теме

Откуда берут кровь на сахар? Как правильно подготовиться к сдаче анализа? Все ответы в видео:

Для полного контроля над уровнем глюкозы в крови необходимо не только регулярно прибегать к лабораторным услугам, но и контролировать уровень содержания сахара в домашних условиях при помощи глюкометра.