Законодательная база российской федерации. Как проводят смывы на гельминты и яйца глист

Гельминтозы человека - одна из самых распространенных групп заболеваний среди населения земного шара. При любом подозрении на заражение гельминтами необходимо сдать анализ на яйца глист. От правильности сбора материала зависит достоверность результатов, поэту важно знать особенности сдачи анализа.

Что обнаруживает анализ

Анализ кала на яйца глистов показывает заражение следующими гельминтами:

Вместе с анализом кала на яйцеглист часто назначается микроскопирование фекалий на цисты и вегетативные формы простейших микроорганизмов.

Это исследование проводится из того же материала. Оно позволяет выявить наличие цист и взрослых форм простейших в нижних отделах желудочно-кишечного тракта.

Когда требуется обследование

Направление на анализ кала на яйца глист дается при следующих обстоятельствах:

Сколько действует справка на яйцеглист? Результат исследования действителен 10 дней.

Как сдавать анализ правильно

От правильности сбора материала для исследования зависит достоверность результата и постановка правильного диагноза.

Какой-либо специфической подготовки не требуется. Достаточно перед тем, как сдать анализ соблюдать некоторые простые правила:

1. Кал нужно собрать в сухую, чистую, плотно закрывающуюся емкость. Специальные баночки под анализы можно приобрести в любой аптеке.
2. Перед актом дефекации нельзя мочиться, чтобы моча не попала в кал.
3. Собрать материал для исследования надо из разных частей каловых масс.
4. Перед забором кала нужно исключить прием слабительных средств, любых препаратов, влияющих на перистальтику кишечника, а также веществ, способных менять окраску фекалий. Нельзя применять лекарственные средства местного действия (свечи, крема, мази).
5. Женщинам нельзя сдавать анализ вовремя менструации.
6. Объем материала должен составлять 1-2 чайных ложки.

Хранить собранный анализ не рекомендуется. Лучше отнести его в лабораторию через 30-40 минут после сбора. Если это невозможно, то нужно поместить материал в холодильник при температуре 5-8 градусов. Хранить не более 8 часов. Чем больше пройдет времени от сдачи материала до доставки его на анализ, тем ниже его достоверность.

Нельзя забывать подписывать контейнеры с материалами на анализ. Приобрести тару можно в любой аптеке, или ее выдадут в лаборатории.

Правила забора материала на анализ для выявления цист и вегетативных форм простейших ничем не отличаются от приведенных выше.

Анализ на энтеробиоз

Из-за особенностей жизненного цикла остриц для диагностики энтеробиоза обычного анализа кала на яйца глистов бывает недостаточно. Тогда делают перианальный соскоб.

Соскоб - это метод обследования, когда материал для изучения получают из области анального отверстия.

1. Метод Грэхема. Суть - забор материала с помощью ленты с липким слоем. Она наклеивается в области ануса, через несколько секунд снимается. Яйца гельминта приклеиваются на ленту.
2. Соскоб по Рабиновичу. Для взятия препарата для исследования используются глазные стеклянные палочки с нанесенным на них специальным клеем для захвата яиц остриц.
3. Соскоб ватным тампоном. Чаще используется у взрослых.

Нельзя ходить в туалет (то есть совершать акт дефекации и мочится). Запрещены любые гигиенические процедуры: подмывание, подтирание салфеткой.

Забор делается в домашних условиях. Для этого применяют наборы, которые выдает врач, лаборатория, или они самостоятельно приобретаются в аптеке. Их два вида:

• со специальной пластиковой пробиркой;
• с предметным стеклом с наклейкой.

Алгоритм сбора набором со специальной пробиркой:

1. Вымыть руки.
2. Надеть латексные или целлофановые перчатки.
3. Палочкой, находящейся в пробирке провести по коже вокруг ануса.
4. Поместить палочку обратно в пробирку.
5. Плотно закрыть крышкой.
6. Выкинуть перчатки. Тщательно вымыть руки.
7. Доставить пробирку в лабораторию.

Алгоритм сбора набором с предметным стеклом:

1. Надеть перчатки.
2. Аккуратно отклеить ленту. Касаться клейкой части нельзя.
3. Наклеить вокруг анального отверстия.
4. Через 2-3 секунды отклеить.
5. Поместить ленту на предметное стекло.
6. Убрать в пакет.
7. Выкинуть перчатки и тщательно вымыть руки.
8. Доставить предметное стекло в лабораторию.

Методы выполнения анализа

Для развернутой гельминтоовариооскопии используют метод Като (метод «толстого мазка»). В нем применяют гидрофильный целлофан, которым накрывают мазок, а также раствор для осветления, состоящий из Малахитовой зелени, Глицерина и Фенола.

Исследование часто проводят с одним из методов обогащения:

• по Калантарян;
• по Фюллеборну.

Оба метода заключаются в удалении с помощью солевых растворов крупных частиц кала и осаживании яиц гельминтов в осадке. Таким образом, количество яиц в микроскопируемом содержимом увеличивается, и повышается вероятность их обнаружения.

Оценка результатов

Для предотвращения получения ложноотрицательных результатов при наличии симптоматики и эпидемиологического анамнеза обследования назначаются несколько раз с перерывом в несколько дней.

Как правильно собрать и сдавать анализы кала на яйца глист

Анализ кала на яйца глист – прямой способ для их определения. Можно выявить самих глистов и простейших их форм – цист, личинок и вегетативных форм. Если при обнаружении были обнаружены гельминты и простейшие их формы, дополнительные исследования назначаются в редких случаях.

Пренебрежение повторным анализом гарантирует то, что гельминтозы будут спокойно развиваться в организме.

Емкость для анализа

С процедурой взятия кала для анализа сталкивался каждый человек хотя бы один раз за свою жизнь. Произвести ее очень легко. Сама процедура несложная, однако есть ряд определенных правил, следование которым обеспечит более точный результат.

1. Анализ кала на глисты начинается с подготовки инструментов. Стерильная посуда – некритичное требование для того, чтобы сохранять стул. Специальные баночки можно приобрести в аптеке или подготовить их самостоятельно.
2. Чтобы сделать посуду стерильной, некоторые мамы ошпаривают ее кипятком. Для экономии средств испражнение можно поместить в обычную стеклянную баночку. Для этой цели подойдет даже пластмассовая посуда.
3. Чтобы обеспечить хорошую герметизацию, обязательное наличие крышек. Их всегда можно приобрести в аптеке, если нет желания мастерить что-то самому.
4. Аптечные емкости имеют в наборе ложечки. С их помощью помещают экскременты в емкость, что упрощает забор кала.
5. Некоторые поликлиники, проводящие анализ кала на яйца глист, выдают такие баночки бесплатно, взяв при этом плату за саму процедуру. В подобных емкостях спокойно можно хранить кал некоторое время до начала анализа.
6. Лаборатория не будет исследовать собранный стул, если он был принесен в коробках из картонной бумаги и подобных приспособлений.

Правила сдачи кала

Конечно, сделать это взрослому человеку легко, но даже такая простая процедура требует соблюдать правила сдачи.

1. Перед тем как сдавать кал, следует отказаться от приема слабительных средств, не делать клизм и не ставить свечи – это влияет на достоверность результата.
2. Собирающийся кал, который будет отправляться на анализ, не должен содержать в себе инородные жидкости – сточную воду, мочу, средства личной гигиены и любые другие выделения. Чтобы исключить попадание различных жидкостей, нужно использовать небольшой лоток.
3. Многие люди не знают, как правильно собрать кал, и делают ошибки. Материал на анализ собирается с различных участков. Готовое количество не должно превышать двух чайных ложек.
4. Лучше собрать анализ после того, как человек помочился. Особенно это касается маленьких детей.
5. У малышей собирать кал можно прямо из памперса.
6. Перед процедурой необходимо подготовить небольшую емкость с крышкой, после чего собрать кал, закрыть крышкой и подписать. Достаточно указать инициалы и дату забора.

Сдача и хранение

Лучше всего анализ делать в день сбора кала, но не все люди могут похвастаться регулярностью процесса. В отличие от мочи, кал годный более длительное время. Делают это с вечера – за сутки до исследования. Хранить кал на яйца глист можно только в закрытой емкости при температуре от 5 до 8 градусов.

В зимнее время подойдет хранение на подоконнике, а летом – в холодильнике. После этого доставка материала в лабораторию должна осуществиться как можно скорее.

Сколько делают анализ

Делается анализ кала в лаборатории. На изучение может понадобиться несколько дней. Готовый результат указывается на специальном бланке, который будет свидетельствовать о наличии или отсутствии глистов. После получения результатов больной готовится к дальнейшему исследованию.

Даже если при сборе кала на яйца глистов результат отрицательный, это не значит, что человек полностью здоров. В некоторых случаях личинок гельминтов не сразу получается обнаружить в испражнениях. Это объясняется тем, что яйца не всегда могут выходить с отходами.

В каких случаях может проводиться исследование

Рассмотрим, как сдавать анализы кала на яйца глист и в каких случаях это необходимо.

Энтеробиоз, который сопровождается следующими симптомами:

• слизь и кровь в испражнениях;
• позывы к рвоте;
• тошнота;
• боли в животе.

О чем говорит результат анализа

Срок действия анализа кала на яйца глист ограничен, поэтому важно провести процедуру вовремя и получить действительный результат. Расшифровка не вызывает трудностей – даже обычный человек может понять, каким оказался анализ. Лечащий врач делает на бланке указание «Обнаружено» или «Не обнаружено».

• круглые черви, вызывающие энтеробиоз;
• ленточные черви;
• нематоды.

Если результат оказался отрицательным, исследование кала на простейшие и яйца гельминтов повторяется еще 2 раза через каждые 4 дня. Только после этого можно рассматривать окончательный результат.

Особенности анализа

Аскаридоз

Исследование кала на простейшие и яйца гельминтов с помощью микроскопа свидетельствует о том, что болезнь находится в кишечной стадии. Кал на яйца глист, личинки которых находятся в мокроте, говорят о фазе миграции. Большое содержание в крови – повышенный уровень специфических антител.

Дуоденальное содержимое с яйцами аскарид – наличие гельминтов в панкреатических протоках.

Энтеробиоз

При анализе на энтеробиоз необязательно использовать каловый метод. Но как собрать при этом материал? На самом деле все очень просто: надо использовать специальную ватную палочку. Называется эта процедура соскобом перианальных складок. Энтеробиоз ставится в том случае, если в результате анализа были обнаружены яйца остриц.

Обнаружить яйца можно не сразу, поэтому анализ на яйцеглист проводят несколько раз подряд. Между процедурами должно пройти от 4 дней до недели.

Лямблиоз

Анализ кала на гельминты помогает выявить лямблий. После сдачи кала проводится повторное микроскопическое исследование.

Заключение

Мы подробно рассмотрели, как нужно сдавать анализ кала на яйца глистов. Процедура несложная, но это не значит, что можно забыть правила сбора. Не забывайте о том, сколько можно хранить фекалии перед исследованием.

Вы даже что-то читали о лекарствах, призванных победить заразу? И в этом нет ничего удивительного, ведь глисты смертельно опасны для человека – они способны очень быстро плодиться и долго жить, а болезни, которые они вызывают, проходят тяжело, с частыми рецидивами.

Плохое настроение, отсутствие аппетита, бессонница, дисфункция иммунной системы, дисбактериоз кишечника и боль в животе… Наверняка вы знаете эти симптомы не понаслышке.

Гельминтозы или глистные инвазии очень распространены среди населения. Согласно статистике, зараженность в западноевропейских странах достигает 50%, в России – 70%. Но наибольшая заболеваемость гельминтозами выявлена при выборочном обследовании населения юго-восточных и африканских государств, где она приближается практически к 100%.

Состояние здоровья у таких людей ухудшается: появляются симптомы различных хронических заболеваний – гастрита, гепатита, развивается анемия, аллергические реакции и другая патология. И сколько бы ни проводилось лечение, оно безуспешно, потому что не выявлена истинная причина болезни. Кроме того, они являются «ходячей инфекцией», подвергая опасности заражения других людей, особенно если в окружении есть ребенок.

Дети, ввиду своей активности и неосведомленности, быстро «подхватывают» инфекцию, не менее активно ее распространяют, и нередко тяжело заболевают. А таблетки от глистов для детей довольно часто бывают очень токсичными, вызывают побочные явления.

Поэтому выявление яиц глистов в кале, рано начатое лечение предупреждают как развитие осложнений гельминтоза, так и заражение окружающих. На основании результата анализа также подбираются глистогонные средства для людей в индивидуальном порядке.

Кому показано исследование на яйца глистов?

Исследование кала на заражение глистами проводится в 3-х случаях:

1. При подозрении на гельминтоз.
2. Профилактическое или «барьерное» обследование.
3. По желанию пациента.

Подозрение на гельминтоз

Заподозрить глистную инвазию (заражение) можно на основании следующих симптомов:

• нарушение работы кишечника (вздутие, запоры, поносы);
• неприятные ощущения в животе – урчание, покалывание;
• общая слабость, недомогание, плохой сон;
• повышенная нервозность, возбудимость, особенно у ребенка;
• бледность кожи;
• снижение веса;
• наличие аллергических высыпаний на коже и слизистых оболочках;
• ухудшение зрения.

«Барьерное» обследование

Согласно приказу Минздрава, это обследование обязательно должны проходить следующие категории людей:

• направляемые на работу в детские учреждения;
• оформляющиеся в предприятия общественного питания, торговую сеть, учреждения массового пребывания людей – санатории, интернаты, дома отдыха;
• идущие на работу в сферу коммунальных и бытовых услуг;
• оформляющиеся в медицинские учреждения – весь персонал, в косметологические и массажные кабинеты, фитнес-клубы, бассейны, парикмахерские;
• проходящие обследование для госпитализации, на операции, для санаторного лечения.

На всех лиц этих категорий оформляется санитарная книжка, куда вносятся результаты медицинского обследования, в том числе и на зараженность глистами. При его обнаружении допуск к работе запрещен до излечения и повторного обследования. Подобный анализ также нужно сдавать во время прохождения этими же категориями людей периодических медицинских осмотров.

Обследование по желанию пациента

Любой человек, допускающий вероятность заражения глистами, может обратиться для обследования и сдавать анализ. Например, если ему довелось побывать в местах с плохими санитарными условиями, в местах большого скопления людей, или же он прибыл из юго-восточных и африканских стран.

Совет: если у вас выявлены яйца глистов, до завершения лечения и контроля следует избегать посещения людных мест, продуктовых магазинов, баров, ресторанов, избегать контакта с ребенком. Будьте гуманны, заботьтесь о здоровье окружающих.

Какие виды гельминтов можно обнаружить в анализе кала?

• острицы (энтеробиоза);
• аскариды человеческой;
• власоглава (трихоцефалез);
• трематоды (описторхоз, фасциолез);
• ленточных червей (солитеров) – бычьего цепня, свиного цепня, гименолепидоза (карликового цепня), дифиллоботриоза (лентеца широкого).

Существует и множество других видов, не получивших большого распространения в наших широтах.

Как правильно собрать анализ?

Для правильного сбора анализа кала нужно соблюдать следующие требования:

Совет: далеко не всегда яйца глистов обнаруживаются с первого раза. Согласно правилам, проводится троекратное исследование с интервалом в 1 неделю, или же столько раз, сколько посчитает нужным врач.

Куда нужно обратиться, чтобы сдать анализ кала на обнаружение глистов?

Направить на обследование в лабораторию для выявления зараженности глистами может, в принципе, врач любой специальности. Взрослые, как правило, обращаются к терапевту, гастроэнтерологу или инфекционисту, в соответствии с жалобами. Ребенка направляет на исследование педиатр.

Анализ кала на яйца глистов – не единственное исследование, позволяющее выявить заражение. Но оно имеет место быть, с учетом высокой заболеваемости гельминтозами, и проводиться в строгом соответствии с правилами, а также с профилактической целью.

Видео

Для того чтобы предотвратить эпидемию глистной инвазии, санитарными врачами в детских учреждениях и на предприятиях пищевой промышленности или общественного питания обязательно должно проводят смывы на гельминты. Для их отбора применяют смоченные в 10%-ном растворе стирального порошка или глицерина беличьи кисточки. Можно для этой цели применять и плотные ватные тампоны. В одну пробирку собираются смывы на яйца гельминтов с нескольких однородных предметов. В последнюю очередь, после того, как обработаны все предметы обихода обследуемого заведения, их необходимо взять и с рук персонала. В случае обнаружения положительного результата это поможет выявить, кто из сотрудников нарушает правила личной гигиены и заражён глистами.

При взятии проб необходимо соблюдение определённой очерёдности. На примере детских учреждений это выглядит следующим образом: первый смыв на гельминтов, считающийся основным, берётся в пищеблоке. Далее по порядку идут столовая, игровая комната и спальня. В последнюю очередь смывы на яйца глист следует взять в умывальнике и туалете. Это исследование в детских учреждениях должно проводиться не реже раза в полугодие. Оптимальным временем для взятия смыва на гельминтов считаются летний и зимний периоды. В лечебных центрах это исследование проводится значительно чаще, обычно 1-3 раза в квартал. Для исследования полученных проб применяется специальная методика.

Кисточки или тампоны с полученным образцом смыва помещаются в центрифужные пробирки, где их обмывают в 10%-ном растворе глицерина или 1%-ном едкого натра. После этого полученную жидкость пропускают через центрифугу. Каплю полученного осадка наносят на предметное стекло и рассматривают под микроскопом для выявления наличия или отсутствия гельминтов.

Прежде чем проводить лечебно-профилактические мероприятия при определенных гельминтозах сельскохозяйственных и промысловых животных, необходимо своевременно поставить точный диагноз болезни. Существуют две группы методов диагностики гельминтозов - прижизненные и посмертные. Кроме того, надо уметь дифференцировать гельминтозы и другие инвазионные, а также инфекционные заболевания.

Прижизненная диагностика гельминтозов

Диагноз на гельминтозы при жизни животных ставят на основании результатов лабораторных методов исследований и диагностических дегельминтизаций (прямых методов), а также иммунобиологических реакций (косвенных методов). Подсобную роль в диагностике гельминтозов играют данные исследований промежуточных хозяев (при биогельминтозах), клинические и эпизоотологические наблюдения. Основные методы диагностики - лабораторные исследования, позволяющие часто обнаруживать возбудителей гельминтозов или их яйца и личинки в экскретах (фекалиях, моче, мокроте), секретах (желчи), тканях (крови, мышцах), органах (кусочках кожи), в содержимом пунктатов и абсцессов.

Лабораторные методы диагностики гельминтозов животных легко выполнимы и достаточно точны, поэтому их широко применяют в производственных условиях (в ветеринарных лабораториях и в других ветеринарных учреждениях). В зависимости от целевого назначения лабораторные исслелования подразделяют на гельминтоовоскопические, гельминтоларвоскопические и гельминтоскопические методы исследований.

Гельминтоларвоскопические методы исследований используют для обнаружения личинок гельминтов (диктиокаул, мюллерий и др.). Из этой группы нередко применяют исследование фекалий по методам Бермана-Орлова и Вайда.

Гельминтоскопические или макрогельминтоскопические исследования применяют с диагностической целью для обнаружения выделяемых наружу гельминтов или их фрагментов (члеников нестод). В практических условиях этим способом устанавливают диагноз на аскаридоз свиней, дрепанидотениоз гусей и другие гельминтозы.

Из лабораторных методов диагностики гельминтозов животных большое практическое значение имеют: а) гельминтокопрологические исследования (исследование фекалий); б) исследование выделений других органов; в) исследование тканей.

Гельминтокопрологические исследования

Для этих же целей предложен специальный прибор, состоящий из стальных браншей, переходных ветвей и двух прикрепленных к ветвям полусферических поверхностей. Взятие фекалий из прямой кишки животных при помощи этого прибора облегчает труд ветеринарных работников и повышает производственную культуру этой манипуляции.

У кроликов фекалии в количестве нескольких шариков извлекают путем надавливания на брюшную стенку в области прямой кишки. Иногда допускается взятие проб фекалий с пола, если они свежие и известно, от какого животного. От одного животного берут не менее 10-20 г фекалий. От птиц, пушных зверей, собак, кошек и диких хищников (в зоопарках) фекалии собирают с чистого пола клеток (групповые пробы).

Все пробы фекалий этикетируют: по краю пакета или листа бумаги (где он не будет соприкасаться с экскрементами) простым карандашом пишут номер пробы (иногда и кличку коров). К пробам фекалий прилагают опись, в которой указывают наименование хозяйства, бригады, вид, пол и возраст животных (для взрослых - кличку или инвентарный номер) и дату взятия проб. В сопроводительной желательно указать цель исследований фекалий (например, для контроля проведенной дегельминтизации). Необходимо стараться быстрее доставить пробы фекалий в ветеринарную лабораторию и исследовать их без задержки, потому что при комнатной температуре через 16-20 часов из яиц кишечных стронгилят выходят личинки, что затрудняет диагностику диктиокаулеза и протостронгилидозов, а также других гельминтозов.

Если пробы фекалий в день взятия не исследуют, то их помещают в холодильник или подвал при температуре не выше 10°. Дезинфицирующие средства не приостанавливают развитие личинок внутри яиц гельминтов. Результаты исследования фекалий регистрируют в специальном журнале.

Оборудование для гельминтокопрологических исследований. Достоверность гельминтокопрологических исследований в значительной степени зависит от качества лабораторного оборудования. В 1968 г. на Украине разработан набор стандартного оборудования для массового исследования фекалий на гельмннтозы. Он состоит из предметов, изготовленных преимущественно из ударопрочного полистерола двух цветов, которые легко моются и обезвреживаются (выдерживают кипячение), а также удобны при транспортировке. В состав набора входят стаканчики различной емкости, воронки, конические пробирки, ситечки разных размеров, штатив с пятью планками (каждая на шесть воронок), кювет (по размерам штатива), коробки для хранения посуды, а также резиновые груши, стеклянные палочки и металлические петли (рис. 1).

В отличие от ранее применявшегося разнородного оборудования новый набор повышает эффективность лабораторных исследований фекалий и производительность труда ветеринарных работников, позволяет шире проводить количественные гельминтокопрологические исследования стандартизированными методами (контроль дегельминтизаций), а также улучшает эстетическую сторону этой работы.

Различают качественные и количественные методы исследований фекалий.

Качественные гельминтокопрологические исследования

Качественные методы исследований позволяют установить, какими гельминтами заражены животные.

Гельминтоовоскопические методы. Для прижизненной диагностики гельминтозов предложено большое количество методов гельминтоовоскопии, из которых рассмотрим только те, которыми чаще пользуются в ветеринарной практике.

Большинство гельминтокопрологических методов диагностики основано на разнице удельного веса яиц, личинок гельминтов или их фрагментов, с одной стороны, и жидкости, в которой взвешены исследуемые фекалии, - с другой. В зависимоти от соотношения удельного веса этих компонентов различают методы флотации, осаждения и комбинированные.

Методы флотации. При методах флотации (всплывания) используют жидкости (насыщенные растворы солей), удельный вес которых больше веса яиц гельминтов. В лабораторной практике наиболее широко применяют насыщенный раствор поваренной соли (удельный вес 1,18). Для приготовления такого раствора в кастрюлю с кипящей водой постепенно добавляют при помешивании хлорид натрия до образования на дне небольшого осадка (на 1 л воды берут около 400 г поваренной соли). Горячий раствор фильтруют в бутыль через несколько слоев марли или вату и применяют после остывания (на дне бутыли должен образоваться кристаллический осадок).

Реже в ветеринарных лабораториях используют насыщенные растворы сульфата магния с удельным весом 1,35 (920 г на 1 л горячей воды), гипосульфита натрия с удельным весом от 1,37 до 1,41, в зависимости от температуры окружающей среды (1750 г на 1 л горячей воды) и азотнокислого натрия с удельным весом 1,4 (соотношение селитры и горячей воды 1:1).

Метод Фюллеборна характеризуется простотой выполнения и высокой эффективностью при большинстве нематодозов и цестодозов животных, поэтому он занимает первое место среди других, гельминтокопрологических методов диагностики. В стеклянный, полистероловый или пластмассовый стаканчик емкостью 50-100 мл помещают 3-5 г фекалий и при помешивании стеклянной палочкой постепенно добавляют насыщенный раствор поваренной соли (хлорида натрия) из расчета на одну часть фекалий 15-20 частей флотационной жидкости. Плотные фекалии овец предварительно можно растереть с небольшим количеством раствора соли в фарфоровой ступке, после чего суспензию переливают в стаканчик, добавив необходимое количество раствора хлорида натрия. Всплывшие крупные частицы сразу удаляют палочкой, а взвесь фекалий целесообразно профильтровать в другой стаканчик через сито (иногда употребляют молочные ситечки). После отстаивания заряженной пробы в течение 45-60 минут металлической петлей снимают три капли поверхностной пленки, помещают их на предметное стекло и микроскопируют без покровного стекла. После каждой пробы петли промывают в стакане с водой (вместо рекомендуемых в некоторых руководствах прожиганий их на спиртовке).

Метод Калантарян - видоизмененный метод Фюллеборна. В качестве флотационной жидкости используют насыщенный раствор азотнокислого натрия. Время отстаивания взвеси 15-30 минут. Применяют для диагностики и акантоцефалезов.

Методы осаждения. При методах осаждения используют жидкости с меньшим удельным весом, чем удельный вес яиц.

Метод последовательного промывания. Небольшое количество фекалий (5 г) размешивают в стаканчике с 10-кратным количеством воды. Смесь фильтруют в большой стакан и доливают воду, после чего фильтрат отстаивают 5 минут. Затем сливают или отсасывают спринцовкой верхний слой жидкости до осадка; к осадку добавляют такое же количество воды, перемешивают и отстаивают снова 5 минут. Эти манипуляции повторяют до просветления верхнего слоя жидкости в стакане. Жидкость последний раз сливают, а осадок наносят на стекло или в бактериологическую чашку и исследуют под микроскопом. Этот метод часто применяют для диагностики большинства трематодозов и акантоцефалезов.

Метод Горшкова основан на принципе осаждения с последующей концентрацией яиц гельминтов. 150-300 г фекалий лошади помещают на металлическое сито или марлю в большую стеклянную воронку диаметром в верхней части 15-20 см. На нижний конец воронки надевают резиновую трубку длиной 10-15 см с зажимом на конце. Фекалии разрыхляют и заливают доверху теплой водой. Фекалии в воронке выдерживают от 4 часов до одних суток, после чего зажим осторожно открывают, часть жидкости выпускают в центрифужные пробирки и центрифугируют 3 минуты. Затем жидкость сливают, а осадок исследуют под микроскопом. Этим методом диагностируют драшейоз и габронематоз лошадей.

Комбинированные методы. Основаны на принципе осаждения и флотации яиц гельминтов, поэтому более эффективны в сравнении с предыдущими методами исследований. Ввиду сложности эти методы имеют сравнительно ограниченное применение в производственных условиях.

Метод Дарлинга. Небольшое количество фекалий (3-5 г) размешивают в стаканчике с 20-30 мл воды, смесь процеживают в центрифужные пробирки и центрифугируют 1-2 минуты, после чего верхний слой жидкости сливают, а к осадку доливают смесь равных частей глицерина и поваренной соли. Смесь в пробирках взбалтывают и вторично центрифугируют. Всплывшие на поверхность яйца снимают вместе с пленкой взвеси проволочной петлей, стряхивают на предметное стекло и микроскопируют. При отсутствии глицерина фекалии можно смешивать перед вторичным центрифугированием с насыщенным раствором поваренной соли.

Метод Щербовича. Техника исследования фекалий напоминает предыдущий метод. Отличается от него тем, что перед вторичным центрифугированием к осадку добавляют насыщенный раствор гипосульфита натрия (при макраканторинхозе свиней) или сернокислой магнезии (). По сравнению с методом Дарлинга этот метод более эффективен.

Флотационно-седиментационный метод Демидова рекомендуют для диагностики фасциолеза, а также других трематодозов жвачных. Пробу фекалий (3 г от овец и 5 г от крупного рогатого скота) помещают в стакан емкостью 200 мл и наливают в него доверху насыщенный раствор поваренной соли и тщательно размешивают стеклянной палочкой, после чего взвесь отстаивают 15-20 минут. Всплывшие на поверхность грубые частицы удаляют бумажным совочком, а надосадочную жидкость отсасывают спринцовкой (при исследовании большого количества проб жидкость можно сливать), оставляя на дне 20-30 мл осадка. К осадку доливают воду до полного объема стакана и тщательно размешивают. Смесь фильтруют в обычный стакан через марлю или металлическое сито и отстаивают 5 минут. Надосадочную жидкость отсасывают, оставляя на дне 15-20 мл осадка, который переносят в конический стаканчик, пропаласкивают обычный стакан и выливают смыв в маленький. Взвесь отстаивают в коническом стаканчике 3-5 минут, а жидкость в последующем отсасывают (эту процедуру повторяют). Просветленный осадок переносят на предметное стекло и микроскопируют. Этот метод эффективнее метода последовательного промывания.

Гельминтоларвоскопические методы. Метод Бермана-Орлова. Для исследования фекалий используют аппарат, состоящий из средней воронки (пластмассовой, полистероловой или стеклянной), резиновой трубки (10-15 см длиной), соединенной верхним концом с воронкой, зажима, укрепленного на нижнем конце резиновой трубки, металлического сита или куска марли и штатива (для одного или нескольких аппаратов). Смонтированный аппарат заполняют теплой водой (35-38°). 10-15 г свежих фекалий кладут на сито или завертывают в марлю и осторожно опускают в воронку. Фекалии от овец выдерживают в аппарате 2-4 часа, а от телят - не менее 6-7 часов. Затем зажим на трубке ослабляют, а вытекающую жидкость собирают в пробирку и центрифугируют в течение 2-3 минут. После этого верхний слой жидкости сливают быстрым опрокидыванием пробирки, а оставшуюся на дне жидкость переносят на предметное стекло и исследуют под микроскопом. Применение зажимов на резиновую трубку в аппарате Бермана связано с неудобствами, поэтому во многих ветеринарных лабораториях нижние концы резиновых трубок непосредственно соединяют с маленькими пробирками. Перед исследованием осадка под микроскопом жидкость не центрифугируют.

Фекалии жвачных можно исследовать на легочные нематодозы (особенно в экспедиционных условиях) упрощенным методом гельминтоларвоскопии (без использования воронок). Для этой цели применяют небольшие полуконические стаканчики (50 мл). Пробы фекалий помещают на ситечки или завертывают в марлю и опускают в стаканчики с водой. Через несколько часов фекалии удаляют, жидкость из стаканчика отсасывают или сливают, а осадок микроскопируют.

Метод Вайда. Несколько шариков фекалий от мелких жвачных помещают в бактериологическую чашку или на часовое стекло и овлажняют их небольшим количеством теплой воды. Через 10-20 минут фекалии удаляют, а оставшуюся жидкость исследуют под малым увеличением микроскопа. Эффективность этого метода значительно ниже в сравнении с предыдущим методом, поэтому его реже применяют для диагностики диктиокаулеза и протостронгилидозов овец.

Метод дифференциальной диагностики стронгилятозов по инвазионным личинкам. Возбудители большинства кишечных стронгилятозов имеют почти одинаковое строение яиц, поэтому при гельминтоовоскопии можно поставить только групповой диагноз (например, стронгилятозы).

Для установления более точного диагноза (родового) в ветлабораториях иногда получают культуру инвазионных личинок стронгилят. Около 5 г фекалий помещают в бактериологическую чашку, закрывают крышкой и ставят ее в термостат при температуре 25-30° на одну неделю. Затем фекалии с личинками исследуют по методу Бермана-Орлова (для выделения инвазионных личинок из фекалий).

Инвазионные личинки разных родов кишечных стронгилят отличаются по величине тела, строению хвостового конца чехлика и по количеству кишечных клеток. Например, личинки эзофагостом более крупные (до 1 мм длины), нитевидный хвостовой конец чехлика длинный, а кишечник имеет 20-32 клетки; личинки гемонхов средней длины (около 0,8 мм), с нитевидным хвостовым концом чехлика, кишечник имеет 16 клеток.

Периодическое промывание и отстаивание фекалий повторяют до просветления верхнего слоя. Верхний слой жидкости последний раз сливают, а осадок малыми порциями просматривают в кюветках с черным и белым дном. Обнаруженных гельминтов собирают при помощи пинцетов, препаровальных игл и кисточек, просматривают под микроскопом, после чего переносят в консервирующую жидкость. Чтобы выявить мелких нематод, осадок дополнительно исследуют по частям при помощи бинокулярной или штативной лупы с 10-20-кратным увеличением.

Количественные гельминтокопрологические исследования

Стандартизированный метод Фюллеборна менее точен в сравнении с методом Столла, но в виду простоты выполнения его широко применяют в ветеринарной практике для контроля эффективности дегельминтизаций животных. По технике выполнения стандартизированный метод напоминает другие методы качественных гельминтоовоскопических исследований. Однако у него имеется ряд особенностей, основными из которых являются следующие: 1) навески фекалий должны быть равными; 2) посуда одного обьема; 3) время отстаивания водных взвесей фекалий одно и то же; 4) петли одинакового диаметра, исследование равного количества капель.

Для ориентировочного учета интенсивности диктиокаулезной и прогостронгилидозной инвазии у жвачных можно применить стандартизированный метод Бермана-Орлова. Достоверность результатов повышается при увеличение количества и кратности исследований.

Исследование выделений других органов

Исследование содержимого конъюнктивальных полостей применяют для диагностики телязиоза крупного рогатого скота (возбудитель - Thelazia rhodesi). Из спринцовки орошают конъюнктивальные полости водным раствором йода; вытекающую жидкость собирают в кюветку или почковидный тазик и осматривают на наличие телязий. В данном случае водный раствор йода оказывает и лечебное действие.

Исследование истечений из клоаки проводят для прижизненной диагностики . Вытекающую слизь помещают на предметное стекло и исследуют под микроскопом с целью обнаружений яиц возбудителя болезни.

Исследование соскоба с перианальных складок - основной метод диагностики . Лопатковидной палочкой или спичкой, смоченной смесью равных частей глицерина и воды, делают соскоб с перианальных складок промежности и внутренней поверхности корня хвоста. Соскоб переносят на предметное стекло в каплю глицерина с водой, накрывают покровным стеклом и микроскопируют. Обнаружение яиц оксиур подтверждает клинический диагноз.

Исследование соскобов кожи из «летних язв» рекомендуется для диагностики кожной формы драшейоза и габронематоза. Соскоб берут со свежеизъязвленной поверхности кожи и помещают в каплю разведенной соляной кислоты (1:1000). Затем препарат расщепляют препаровальными иглами, накрывают покровным стеклом и исследуют под микроскопом для обнаружения личинок драшей или габронем.

Исследование тканей

Исследование кожи крупного рогатого скота (по Гнединой) применяют для диагностики онхоцеркоза. На нижней брюшной стенке у животного после подготовки операционного поля вырезают небольшой кусочек кожи толщиной 2 мм (с небольшое овсяное зерно), а ранку смазывают настойкой йода. В ветеринарной лаборатории этот кусочек кожи помещают на предметное стекло в физиологический раствор, расщепляют препаровальными иголками, а затем все сливают в центрифужную пробирку и ставят ее на несколько часов в термостат при температуре 37-38°. Затем волокна кожи удаляют, жидкость центрифугируют, а осадок микроскопируют с целью обнаружения подвижных микроонхоцерков.

Исследование кусочков мышц на часто проводят посмертно. Иногда для прижизненной диагностики трихинеллеза используют метод биопсии. Путем оперативного вмешательства вырезают кусочек мышцы (например, из наружных мышц уха), из которых готовят мелкие срезы (с овсяное зерно). Последние помещают на нижнее стекло компрессория, покрывают верхним стеклом и сближают их винтами до полного расплющивания. Просматривают срезы под трихинеллоскопом, малым увеличением микроскопа, с помощью проекционного трихинеллоскопа или проекционной камеры КТ-3.

Диагностические дегельминтизации

Для диагностической дегельминтизации отбирают несколько животных, изолируют от остального поголовья и задают им антгельминтик в терапевтической дозе. Выделенные в течение одних-двух суток фекалии от этих животных собирают и подвергают гельминтоскопическому исследованию на предмет обнаружения возбудителя болезни. В производственных условиях диагностические дегельминтизации нередко проводят для прижизненной диагностики мониезиоза жвачных, дрепанидотениоза гусей, цестодозов плотоядных, аскаридоза свиней и аскаридиоза кур.

Иммунологические реакции

Аллергические кожные реакции предложены для прижизненной диагностики фасциолеза овец, описторхоза плотоядных, и , мониезиоза овец, гемонхоза и диктиокаулеза овец, онхоцеркоза крупного рогатого скота и лошадей и трихинеллеза свиней.

Из серологических методов следует указать на реакцию сколексопреципитации, позволяющую диагностировать ранние стадии эхинококкоза и реакцию преципитации с использованием живых личинок аскарид и трихинелл для выявления соответствующих гельминтозов.

Исследование промежуточных хозяев гельминтов

Результаты гельминтологического обследования животных всегда должны дополняться данными исследований на гельминтозы промежуточных хозяев. Они позволяют выяснять гельминтологическую ситуацию, прогнозировать появление гельминтозов. Промежуточными хозяевами гельминтов могут быть моллюски (пресноводные и сухопутные), ракообразные (циклопы, дафнии, бокоплавы, водяные ослики), дождевые черви, насекомые (мухи, мошки, мокрецы, стрекозы, муравьи, жуки), почвенные клеши.

Эпизоотологическое значение имеет плотность (количественный состав) отдельных видов промежуточных хозяев. Чем она выше, тем больше имеется возможностей для заряжения животных гельминтозями. Наземные промежуточные хозяева находятся в разных местах (в навозных кучах, на выгулах, пастбищных участках и др.). Водные промежуточные хозяева в огромном количестве обитают у берегов стоячих мелких водоемов, в зарослях растений. В этих местах животные (особенно ) часто заражаются гельминтозами.

Промежуточных хозяев на наличие личинок гельминтов надо исследовать в свежем (лучше живом) состоянии под бинокулярной лупой или малым увеличением микроскопа. Личиночные стадии гельминтов в теле промежуточных хозяев находятся на разных стадиях развития, но наиболее заметными являются инвазионные личинки. В итоге исследований определяется экстенсивность (процент) и интенсивность (количество) инвазированности промежуточных хозяев личинками определенных видов гельминтов.

Орибатидные или панцирные, клещи (до 1 мм длины). Обитают в верхних слоях почвы. Это промежуточные хозяева мониезий жвачных и других гельминтов. Для обнаружения личинок ленточных червей (цистицерроидов) предварительно в капле воды на предметном стекле (под контролем лупы) расщепляют на части панцирь орибатидного клеща, затем препарат покрывают покровным стеклом и микроскопируют. Цистицеркоиды мониезий округлой формы (0,15-0,19 мм в диаметре), снабжены четырьмя присосками и хвостовым придатком. Они очень нежные, поэтому не следует применять метод компрессорного исследования клещей.

Дождевые черви других родов (Criodrilus, Eophila) обитают в водоемах с топкими, илистыми берегами. Они зарегистрированы в качестве промежуточных хозяев возбудителей гистрихоза и порроцекоза уток. Личинка гистрихиса очень крупная (до 3 см длины), беловатого цвета, просвечивает сквозь кожные покровы червя в виде волнистой полосы. Личинки порроцекумов в десять раз меньше предыдущей личинки (2,5-3 мм); они обнаруживаются в кровеносных сосудах при компрессорном исследовании дождевых червей под микроскопом.

Исследование бокоплавов. Бокоплавы достигают длины до 2 см, обитают в морских и пресноводных водоемах. Зарегистрированы они в качестве промежуточных хозяев возбудителей полиморфоза. стрептокароза и тетрамероза птиц. Личинок обнаруживают при компрессорном исследовании этих рачков. Личинки (акантеллы) полиморфуса овальной формы, оранжевого цвета, до 1 мм длины, заметны макроскопически.

Исследование водяных осликов. Водяные ослики от 1 до 1,5 см длины, живут в пресноводных водоемах, являются промежуточными хозяевами возбудителя филиколлеза птиц. При компрессорном исследовании можно выявить личинку (акантеллу) белого цвета, овальной формы, 0,7 мм длины.

Можно также исследовать и других промежуточных хозяев (мошек, мокрецов, мух, стрекоз, жуков, муравьев).

Люминесцентная микроскопия

Метод люминесцентной микроскопии (по В. Г. Эврановой) - новый метод диагностики гельминтозов. Он позволяет дифференцировать однотипные яйца разных видов гельминтов, а также отличать жизнеспособные яйца и личинки от мертвых. Предварительно яйца трематод, цестод и нематод обрабатывают растворами акридина оранжевого и другими флуорохромами. Жизнеспособные яйна и личинки нематод не люминесцируют или слабо люминесцируют, в то время как мертвые ярко светятся и окрашены в оранжевый, желто-зеленый или желтый цвет.

При люминесцентной микроскопии можно дифференцировать яйца главнейших цестод плотоядных, яйца возбудителей и гетеракидоза кур, имеющих, как известно, сходное строение по величине, форме и окраске, а также различать жизнеспособные и мертвые ооцисты кокцидий.

Препараты просматривают под микроскопом МУФ-3 или МЛ-2. Методика люминесцентной микроскопии сравнительно проста и может быть использована в производственных условиях (ветеринарных лабораториях).

Из других исследований, имеющих подсобное значение в установлении диагноза на гельминтозы. можно указать на такие, как выяснение морфологического состава крови (учет эозинофилии), метод определения фракции белков.

Краткая характеристика яиц гельминтов

Яйца представителей разных классов различаются по величине, цвету, форме, строению оболочек и внутреннего содержимого.

Яйца трематод. Чаще овальной формы с крышечкой на одном полюсе. Оболочка гладкая. У некоторых видов оболочка снабжена филаментами (отростками), бугорками. Окраска яиц от светло-серой до коричневой (чаще желтая).

Яйца цестод. Бывают двух типов: лентецов и цепней. У лентенов они напоминают яйца трематод (овальные с крышечкой). Яйца цепней резко отличаются по строению от яиц гельминтов других классов: они чаще средней величины, округлой формы, серого цвета, зрелые (внутри зародыш - онкосфера с тремя парами эмбриональных крючьев).

Яйца нематод. Отличаются от яиц трематод отсутствием крышечки; от яиц цестод - отсутствием онкосферы.

Размеры, форма, строение и цвет оболочек яиц нематод очень разнообразны. Наружная оболочка бывает гладкой, бугристой, ячеистой: толщина оболочек варьирует от тонкой (у стронгилят) до толстой (у трихоцефал). У большинства нематод яйца овальной формы, симметричные, у некоторых - получилиндрические (у драшей). Большинство нематод выделяют наружу незрелые яйца на предсегментационной стадии или нескольких шаров дробления, меньшинство - зрелые (внутри яйца сформирована личинка).

Яйца скребней. Они имеют овальную, эллипсоидную и веретенообразную формы: размер их от среднего до крупного. Выделяемые во внешнюю среду яйца содержат внутри личинку - акантор с десятью эмбриональными крючьями (зрелые).

Клинические наблюдения

Эпизоотологические данные

При диагностике многих гельминтозов сельскохозяйственных животных значительную помощь оказывают эпизоотологические данные (неблагополучие хозяйства по конкретным болезням, сезон года, возраст больных животных, характер пастбищ и водоисточников, метеорологические условия и др.). Например, массовое заболевание с признаками брюшных водянок и падеж овец осенью после дождливого лета и использование под выпасы заболоченных участков пастбищ дает основание заподозрить острую форму фасциолеза. Заболевание гусят летом с признаками расстройства пищеварения (поносы) и нервной системы (парезы) после выпаса их на мелком стоячем водоеме, обильно заселенном циклопами, является основанием для установления предполо-жительного диагноза на дрепанидотениоз. Падеж ягнят весной (через 3-4 недели после начала пастбищного содержания) должен вызвать подозрение о заболевании молодняка овец мониезиозом. Необходимо также учитывать зональные особенности гельминтозов домашних животных, желательно в комплексе с клиническими наблюдениями.

Трихомониаз — очень распространённая половая инфекция, но точно подтвердить её без лабораторных анализов невозможно. Ещё в 1980-е годы исследования показали: если ограничиваться только опросом и осмотром пациента, то правильно диагностировать трихомоноз можно только в 12% случаев. Поэтому лабораторная диагностика трихомониаза у мужчин и женщин значит очень много.

Чтобы выявить возбудителя (влагалищную трихомонаду), врачи используют разные методы исследования. Какие-то анализы точнее, а какие-то — часто ошибаются; некоторые стоят умеренно, а некоторые — довольно дороги.

Разбираемся, какие бывают анализы на трихомониаз у мужчин и женщин: точность методов, стоимость, плюсы и минусы.

Кратко о каждом методе: Микроскопия, посев, ПЦР, ИФА, РИФ

При подозрении на любое инфекционное заболевание пациенту назначают общие анализы крови и мочи. Их результаты могут сигнализировать о воспалении, но не показывают, какой именно возбудитель является причиной.

Например, при воспалении из-за трихомонады уровень лейкоцитов в крови может быть повышен — но также он будет повышенным и при воспалении по причине других инфекций. Поэтому данный анализ не говорит ничего конкретного.

Чтобы точно определить возбудителя, нужны другие методы диагностики. Есть несколько принципиально разных способов обнаружить трихомонады. Они отличаются по сложности выполнения, срокам и достоверности. Так или иначе, все они нашли свое место в диагностике заболевания.

Разберём подробнее эти методики и роль, которую они играют в постановке правильного диагноза.

Микроскопия нативного мазка

Термином «нативный» в медицине и биологии называют предмет или материал, который находится в природном состоянии — то есть его никак не изменяли и не обрабатывали. Соответственно, нативный мазок — это обычный мазок с половых или выделительных органов человека, который не окрашивают и никак не изменяют для исследования.

Изучение такого мазка под микроскопом — самый распространенный метод диагностики трихомониаза. Как выглядят трихомонады в нативном мазке, можно увидеть ниже на фото.

Для этого анализа нужны выделения и немного клеток:

• из уретры
• влагалища
• цервикального канала пациента/пациентки.

Строго говоря, процедуру следует называть не «мазок», а «соскоб», потому что для материала берут не только выделения, но и сами клетки слизистой. Сдавать соскоб не очень приятно, но не больно.

Взятый материал помещают в пробирку и направляют в лабораторию.

В лаборатории клетки из соскоба изучают под микроскопом. Если среди них в мазке есть трихомонада, её выдадут:

• крупные размеры (в сравнении с человеческими летками)
• наличие жгутиков
• характерная подвижность.

С помощью этого метода отличить трихомонаду от других микробов можно с вероятностью 80-100%.

Но есть у нативного мазка и минусы.

К сожалению, долгая транспортировка материала до лаборатории может значительно снизить точность метода. Дело в том, что с момента взятия материала трихомонады с каждой минутой теряют подвижность, и распознать их становится тяжелее. В идеале клетки из соскоба надо сразу поместить под микроскоп. По правилам, нативный материал рекомендуется исследовать не позднее, чем через 10 минут после соскоба. Но в условиях обычной российской больницы или лаборатории такое почти неосуществимо.

Именно поэтому точность микроскопии нативного мазка не очень высока и составляет от 40% до 80%. То есть трихомонаду по-прежнему не перепутают с другими возбудителями, если она подвижна — но могут не обнаружить ее совсем, если она не двигается.

Несмотря на недостатки, данный метод может быть полезен при профосмотрах или первичных визитах к венерологу. Он не требует сложного оборудования и позволяет заодно выявить другие микроорганизмы (но не все) при смешанном заражении. Кроме того, такой анализ можно абсолютно бесплатно сдать в государственном лечебном учреждении. В частных клиниках, цена на услугу составляет 150-200 рублей.

Микроскопия окрашенного мазка

Исследование окрашенных мазков повышает шансы обнаружить трихомонаду. Материал берут также, как и нативный мазок (то есть, по сути, это тоже — соскоб). Но для этого исследования материал уже специально подготавливают: перед тем, как рассматривать под микроскопом, к нему добавляют особые вещества. Это красители, которые придают цвет трихомонаде — если, конечно, она есть в мазке. Так лаборанту проще отличить trichomonas vaginalis от других клеток и частиц. Вся процедура не превышает одного часа.

Но и этот анализ не совершенен. Дело в том, что не все красители позволяют отличить возбудителя инфекции от человеческих клеток.

Чаще всего для подготовки материала применяют метиленовый синий краситель или окрашивание по Граму (сложный метод окрашивания с использованием нескольких красящих веществ). К сожалению, эти способы не позволяют достаточно четко выделить трихомонаду среди клеток эпителия и иммунных клеток. Распознать микроба сложно, потому что трихомонада походит на человеческие клетки и окрашивается с ними почти одинаково.

Гораздо эффективнее окрашивание по методу Романовского-Гимзе . Краска Романовского имеет сложный состав, который включает метиленовый синий, эозин и азур, и позволяет четко выделить трихомонаду из окружающих клеток. Окрашивание этим методом используют далеко не в каждой лаборатории — готовить этот красящий раствор довольно сложно, что увеличивает стоимость анализа.

В зависимости от красящего вещества, цена анализа составляет в среднем 400 — 600 рублей. В некоторых регионах анализ доступен бесплатно по программе ОМС .

В среднем достоверность метода составляет 80%.

Исследование мазка под микроскопом, будь то нативный или окрашенный мазок, еще называют бактериоскопическим исследованием .

Культуральное исследование (посев)

По сравнению с микроскопией нативного и окрашенного мазков, культуральный метод диагностики намного эффективнее. Например, в 1990 году в ходе сравнительного исследования точно выявить трихомонаду получилось у 80% пациентов именно с помощью посева.

Суть метода в том, что на питательную среду помещается материал, взятый от пациента (при подозрении на трихомониаз — это мазок из половых органов). Попав в «пищевой рай», трихомонады, которые есть мазке, интенсивно размножаются, и через 3-4 дня их легко обнаружить под микроскопом. Если же микробы не размножились — с большой вероятностью их не было в мазке, и значит, человек здоров.

Питательная среда — это вещество или смесь веществ, которая подходит для выращивания микроорганизмов. Для каждого возбудителя нужен свой состав питательной среды: на одних средах они размножаются хорошо, а на других — могут вообще не плодиться.

Очень хорошо трихомонада растет на питательных средах импортного производства, например, InpouchTV и Diamond. Но в нашей стране эти среды используют очень редко, обычно — в частных клиниках, потому что это дорогие смеси.

Но даже с учётом российских условий бакпосев на трихомонады — один из самых надежных анализов. Его точность на качественных питательных средах достигает 90%. Тем не менее культуральное исследование назначают далеко не всегда, поскольку оно требует времени и финансовых затрат.

Цена на исследование колеблется от 500 до 5000 рублей, что во многом зависит от используемой питательной среды и финансовой политики учреждения.

Метод ПЦР

Лабораторные исследования способны практически безошибочно диагностировать трихомониаз. Самыми достоверными из них являются ПЦР и культурологическое исследование. Если анализы, полученные этими методами отрицательны, то это практически на 100 процентов свидетельствует об отсутствии заболевания, о чем бы не говорили другие методы.

Помните, что какими бы не были результаты анализов, ничего страшного и непоправимого не случилось, и избавиться от этой неприятной инфекции совсем несложно.

При обнаружении яиц гельминтов на различных объектах окру­жающей среды (почва, вода, овощи и др.) всегда необходимо опре­делять их жизнеспособность по внешнему виду, окрашиванием ви­тальными красками, культивированием в оптимальных условиях и постановкой биологической пробы, т.е.

Скармливанием лаборатор­ным животным.

Определение жизнеспособности яиц или личинок гельминтов по внешнему виду. Яйца гельминтов микроскопируют вначале при ма­лом, затем при большом увеличении. У деформированных и мерт­вых яиц гельминтов оболочка разорвана или прогнута внутрь, плаз­ма мутная, разрыхлена. У сегментированных яиц шары дробления (бластомеры) неравного размера, неправильной формы, часто сдви­нуты к одному полюсу. Иногда встречаются аномальные яйца, ко­торые, имея внешние уродства, развиваются нормально. У живых личинок аскарид мелкая зернистость имеется только в средней час­ти тела, по мере их гибели зернистость распространяется по всему телу, появляются крупные блестящие гиалиновые вакуоли - так называемые нитки жемчуга.

Для определения жизнеспособности зрелых яиц аскарид, власо­главов, остриц следует вызывать активные движения личинок лег­ким подогреванием препарата (до температуры не выше 37 °С). Жиз­неспособность личинок аскарид и власоглавов удобнее наблюдать после их выделения из скорлупы яйца надавливанием на покровное стекло препарата препаровальной иглой или пинцетом.

У инвазионных личинок аскарид часто замечается чехлик, отсло­ившийся на головном конце, а у закончивших развитие в яйце ли­чинок власоглавов на этом месте при большом увеличении обнару­живается стилет. У погибших личинок гельминтов независимо от места их нахождения (в яйце или вне его) замечают распад тела. При этом внутренняя структура личинки становится глыбчатой или зер­нистой, а тело мутным и непрозрачным. В теле обнаруживаются ва­куоли, а на кутикуле - разрывы.

Жизнеспособность онкосфер тениид (бычьего, свиного цепней и др.) определяют по движению зародышей при воздействии на них пищеварительных ферментов. Яйца помещают на часовое стекло с желудочным соком собаки или искусственным дуоденальным соком. Состав последнего: панкреатина 0,5 г, натрия бикарбоната 0,09 г, дистиллированной воды 5 мл. Часовые стекла с яйцами ставят в термостат при 36-38 “С на 4 ч. При этом живые зародыши осво­бождаются от оболочек. Оболочки живых онкосфер также раство­ряются в подкисленном пепсине и в щелочном растворе трипсина через 6-8 ч в термостате при 38 °С.

Если поместить яйца тениид в 1 % раствор натрия сульфида, или 20 % раствор натрия гипохлорида, или же в 1 % раствор хлорной воды при 36-38 °С, зрелые и живые зародыши освобождаются от оболочек и не изменяются в течение 1 сут. Незрелые и мертвые он­косферы сморщиваются или набухают и резко увеличиваются, а затем «растворяются» в течение 10 мин - 2 ч. Живые зародыши тениид также активно двигаются в смеси 1 % раствора натрия хлорида, 0,5 % раствора натрия гидрокарбоната и желчи при 36- 38 °С.

Жизнеспособность сколексов эхинококков определяют при сла­бом нагревании. Для этого отмытые в воде сколексы или выводко­вые капсулы помещают в каплю воды на предметное стекло с лу­ночкой, покрывают покровным стеклом и исследуют под микроско­пом с нагревательным столиком при температуре 38-39 °С. Если отсутствует нагревательный столик, препарат подогревают при помощи любого источника тепла. При этом жизнеспособные ско­лексы активно двигаются, сокращая или расслабляя присоски, уд­линяя и укорачивая хоботок. Если поместить сколексы в 0,5-1 % водный раствор филицилена при комнатной температуре, то все жизнеспособные сколексы быстро вывернутся и погибнут. Нежиз­неспособные сколексы при этом не вывертываются.

Жизнеспособность адолескариев фасциол, собранных на расте­ниях и других объектах водоемов, проверяют исследованием их на предметном стекле в физиологическом растворе под микроскопом с нагревательным столиком. При подогревании личинки тремато­ды, находящиеся в цисте, начинают двигаться.

Жизнеспособность яиц карликового цепня определяют по распо­ложению крючьев на зародыше.

В живых яйцах карликового цепня происходят вялые маятнико­образные движения протоплазмы и почти незаметные раздвигания и сдвигания заостренных концов латеральной пары крючьев в сто­роны от средней пары.

Сокращения протоплазмы зародыша и зародышевых крючьев помогают зародышу освободиться сначала от оболочек онкосферы, а затем и от наружной оболочки яйца.

В живом яйце медианная пара и боковые пары крючьев распо­ложены параллельно, в некоторых яйцах лезвия боковых пар сбли­жены и расположены по отношению к средней паре крючьев под углом менее 45°.

Погибающий зародыш конвульсивно сокращается и вяло раздви­гает крючья. В погибшем зародыше движение крючьев прекраща­ется, и они располагаются в беспорядке, иногда же латеральные по отношению к соседней паре крючья бывают раздвинуты под пря­мым, тупым или острым углом.

Иногда наблюдаются сморщивание зародыша, образование зер­нистости. Более точен метод, основанный на появлении движений онкосферы при резкой смене температур: от 5-10 до 38-40 °С.

Определение жизнеспособности незрелых нематод следует изу­чать во влажной камере (чашках Петри), помещая яйца аскарид в 3 % раствор формалина, приготовленный на изотоническом раство­ре натрия хлорида при температуре 24-30 °С, яйца власоглавов в 3 % раствор соляной кислоты при температуре 30-35 °С, яйца ост­риц в изотонический раствор натрия хлорида при температуре 37 “С. Чашки Петри следует открывать 1-3 раза в неделю для луч­шей аэрации и снова увлажнять фильтровальную бумагу чистой водой.

Наблюдения за развитием яиц гельминтов ведут не реже 2 раз в неделю. Отсутствие признаков развития в течение 2-3 мес свиде­тельствует о их нежизнеспособности. Признаками развития яиц гель­минтов являются сначала стадии дробления, деление содержимого яйца на отдельные бластомеры. В течение первых суток развивает­ся до 16 бластомер, которые переходят во вторую стадию - морулу и т.д.

Яйца анкилостомид культивируют в стеклянном цилиндре (вы­сотой 50 см и диаметром 7 см), закрытом пробкой. Смесь из рав­ных объемов стерильного песка, древесного угля и испражнений с яйцами анкилостомид, разведенную водой до полужидкой консис­тенции, осторожно наливают на дно цилиндра при помощи стеклян­ной трубки. В течение 1-2-суточного отстаивания в темноте при температуре 25-30 °С из яиц вылупляются рабдитовидные личин­ки, а через 5-7 сут они становятся уже филяриевидными: личинки выползают вверх по стенкам цилиндра, где видны даже невооружен­ным глазом. Естественно развивающиеся в воде яйца трематод, на­пример описторхов, дифиллоботриид, фасциол и др., помещают на часовое стекло, чашку Петри или в другой сосуд, наливают неболь­шой слой обычной воды. При культивировании яиц фасциол сле­дует учесть, что они быстрее развиваются в темноте, при этом в живых яйцах при температуре 22-24 °С через 9-12 сут формиру­ется мирацидий. При микроскопировании развивающихся яиц тре­матод хорошо заметны движения мирацидия. Мирацидий фасциолы из оболочек яйца выходит только на свету. При культивирова­нии воду меняют через 2--3 сут.

Личинки анкилостомид и стронгилоид культивируют на агаре в чашке Петри с животным углем. После нахождения в термостате при температуре 26-30 °С в течение 5-6 сут личинки расползают­ся по агару, оставляя за собой дорожку из бактерий (метод Фюллеборна).

Метод Harada и Mori (1955). В пробирки, помещенные в штатив, добавляют 7 мл дистиллированной воды. Деревянной палочкой бе­рут 0,5 г испражнений и делают мазок на фильтровально# бумаге (15X150 мм) в 5 см от левого края (эту операцию проводят на листе бумаги, чтобы защитить поверхность лабораторного стола). Затем полоску с мазком вставляют в пробирку так, чтобы свободный от мазка левый конец достигал дна пробирки. Верхний конец накры­вают куском целлофана и плотно обхватывают резинкой. На про­бирке пишут номер и фамилию обследуемого. В таком состоянии пробирки хранят в течение 8-10 сут при температуре 28 °С. Для изучения культуры снимают и удаляют целлофановую покрышку и извлекают пинцетом полоску фильтровальной бумаги. При этом следует проявлять осторожность, так как небольшое количество инвазионных личинок может передвигаться к верхнему концу филь­тровальной бумаги или к стенке пробирки и проникать под повер­хность целлофана.

Пробирки помещают в горячую водяную баню при температуре 50 °С на 15 мин, после чего содержимое их встряхивают и быстро переливают в 15-миллилитровую пробирку для осаждения личинок. После центрифугирования надосадочную жидкость удаляют, а оса­док переносят на предметное стекло, накрывают покровным стек­лом и микроскопируют под малым увеличением.

Для дифференциального диагноза филяриевидных личинок не­обходимо пользоваться данными, представленными в табл. 13.

Методы окрашивания яиц и личинок гельминтов. Мертвые тка­ни в большинстве случаев воспринимают краски быстрее, чем жи­вые. Эти особенности используют в гельминтологии для определе­ния жизнеспособности яиц и личинок гельминтов. Однако в отдель­ных случаях некоторые краски лучше воспринимаются живыми тканями, чем мертвыми.

Таблица 13. Дифференциальная диагностика филярневидных личинок A.duodenale, N.americanus, Strongyloides stercoralis, Trichostrongylus spp.

Для дифференциального распознавания живых и мертвых яиц и личинок применяют следующие краски и способы.

Для окраски живых и мертвых тканей используют лейкобазу метиленового синего. Живая клетка или ткань редуцируют метиле­новый синий в бесцветную лейкобазу, мертвая ткань не обладает такой способностью, поэтому приобретает окраску.

Для окраски яиц аскарид можно использовать метиленовый си­ний в растворе молочной кислоты с едкой щелочью (метиленового синего 0,05 г, едкого натра 0,5 г, молочной кислоты 15 мл). Живые яйца окраску не воспринимают, зародыши мертвых яиц окрашива­ются в синий цвет.

Метод окрашивания неприменим для незрелых яиц аскарид и власоглавов; пигментированная оболочка прокрашивается, и поэтому не видно, окрасилась ли зародышевая клетка внутри яйца.

Окрашивание личинок аскарид основным раствором краски бриллианткрезилового синего в концентрации 1:10 ООО осуществля­ют следующим образом: на предметное стекло наносят каплю жид­кости с яйцами аскарид и каплю основного раствора краски. Пре­парат накрывают покровным стеклом, которое плотно прижимают к предметному при легком постукивании препаровальной иглой. Под микроскопом наблюдают количество вышедших личинок и степень их окрашиваемости, после чего этот же препарат просмат­ривают повторно через 2-3 ч. Живыми считаются только недеформированные личинки, не окрасившиеся в течение 2 ч. Мертвые ли­чинки окрашиваются при разрыве скорлупы (частично или полно­стью).

Указывается на возможность окраски препаратов раствором йода при определении жизнеспособности яиц аскаридий птиц. В ка­честве красителя в этом случае используют 5 % спиртовой раствор йода. При его нанесении на препарат зародыши мертвых яиц аска­ридий в течение 1-3 с окрашиваются в оранжевый цвет. Мертвые яйца описторха и онкосферы бычьего цепня окрашиваются раство­ром толуидинового синего (1:1000), а мертвые онкосферы бычьего цепня - раствором бриллианткрезилового синего (1:10 000). При этом приобретают цвет зародыши и оболочки как мертвых, так и живых яиц. Поэтому после окраски яйца и онкосферы отмывают в чистой воде и дополнительно окрашивают сафранином (в разведе­нии 1:10 000 10 % раствора спирта). Спирт удаляет краску с оболо­чек, а сафранин придает им красный цвет. В результате живые яйца окрашиваются в красный цвет, зародыш у мертвых - в синий, а оболочка остается красной. Мертвые зародыши онкосфер бычьего цепня быстро, в течение нескольких минут, окрашиваются в ярко-красный или розовый цвет сафранином либо в синий цвет бриллианткрезиловым синим в разведении 1:4000 или же индигокармином в разведении 1:1000-1:2000.

Живые зародыши не изменяются под влиянием этих красок даже спустя 2-7 ч.

Для определения жизнеспособности яиц карликового цепня ре­комендуется использовать следующие краски: 1) бриллианткрезиловый синий (1:8000) - через 1 ч у мертвых яиц особенно ярко окра­шивается онкосфера, которая резко выделяется на бледном или бес­цветном фоне остального яйца; 2) сафранин: в разведении 1:8000 при воздействии в течение 2 ч и 1:5000 - в течение 3-5 ч; 3) 50 % ра­створ пирогалловой кислоты в разведении 1:2 - при воздействии в течение 1 ч при температуре 29-30 “С (чем ниже температура, тем продолжительнее процесс окрашивания).

Живые плероцеркоиды лентеца широкого очень хорошо прокраши­ваются водным раствором (1:1000) нейтральрот в течение 5-20 мин. Для получения стойкой розовой окраски, не исчезающей в течение 5 сут и не влияющей на подвижность плероцеркоидов, обычно дос­таточно 10 мин. Степень окраски контролируют путем просмотра личинок в чистом изотоническом растворе натрия хлорида, для чего плероцеркоидов периодически извлекают из краски. Целесообраз­но применять метиленовый синий для окрашивания мертвых пле­роцеркоидов.

Р.Э.Чобанов и др. (1986) предложили методику определения жиз­неспособности яиц и личинок гельминтов с использованием в каче­стве красителя пигмента «рубрин», получаемого при культивиро­вании плесневого гриба Peniciliium rubrum. Для этого используют 3 % водный раствор красителя.

Процесс окраски яиц и личинок завершается через 1,5 ч. Нежиз­неспособные яйца остриц, бычьего и карликового цепней, анкило­стомид, трихостронгилид приобретают интенсивный розовый цвет, личинки анкилостомид и трихостронгилид - красный. Менее яр­кая окраска наблюдается у яиц аскарид и власоглавов, так как, выделяясь из кишечника, они уже имеют темно-коричневый цвет: Жизнеспособные яйца и личинки не окрашиваются.

Физико-химические методы стимуляции выхода мирацвдия из яиц трематод. Методы разработаны С.М.Герман и С.А.Беэром (1984) для определения жизнеспособности яиц описторхов и дикроцелиумов путем воздействия реакционной среды на яйца. Если они живые, происходит выхождение мирацидия. Методы основаны на физико­химической активации железы вылупления мирацидия и стимуляции двигательной активности личинки. Стимуляция достигается воздей­ствием на яйца трематоды специальной реакционной среды в соче­тании с последовательными приемами - созданием перепада тем­ператур, подсушиванием взвеси яиц, воздействием слабого тока жидкости в исследуемой капле, которые способствуют массовому выходу мирацидиев из яиц.

Определение жизнеспособности яиц описторха по методу Герман, Беэра. Взвесь яиц в воде (водопроводной, отстоявшейся) предвари­тельно охлаждают до 10-12 °С. Все последующие операции осуще­ствляют при комнатной температуре (18-22 °С). В центрифужную пробирку вносят одну каплю (примерно 0,05 мл) взвеси, содержа­щей 100-400 яиц. Пробирки ставят в штатив на 5-10 мин, чтобы осадить яйца. Затем узкой полоской фильтровальной бумаги осто­рожно отсасывают излишек воды до полного ее удаления. В пробир­ку добавляют 2 капли среды, встряхивают, содержимое переносят пипеткой на предметное стекло и оставляют на 5-10 мин, слегка покачивая (или же помещают под фен) для создания слабых токов жидкости в исследуемой капле взвеси. Эта операция, имитирующая перистальтику кишечника моллюска, позволяет активизировать выход мирацидиев. После этого к взвеси добавляют еще 2 капли среды и затем препарат микроскопируют с помощью обычного све­тового микроскопа (Х200). За это время у яиц с жизнеспособным мирацидием должна открыться крышечка, при этом личинка актив­но выходит в среду. Благодаря наличию в ней этанола мирацидий через 3-5 мин обездвиживается, а затем прокрашивается красите­лем, находящимся в среде. В итоге легко обнаруживают и подсчи­тывают мирацидии.

Приготовление реакционной среды. Среду готовят на 0,05 М трис- HCi буфере в оптимальных режимах pH 8,0-9,5. В буфер добавля­ют этанол до 10-13 % и краситель (сафранин, метиленовый синий и другие, работающие в пределах pH) до слабого окрашивания жидкости (например, для сафранина его конечная концентрация составит 1:50 000). Можно использовать и другой буфер, работаю­щий в щелочных пределах pH, например 0,05 М фосфатный (pH 8,5). Следовательно, среда содержит 96 % этанол - 12 частей; краситель (маточный раствор) - 1-10 частей; 0,05 М трис-НС! буфер (pH 8,5-9,5) - до 100 частей. Пример среды: 12 частей 96 % этанола, 1 часть насыщенного раствора сафранина, остальное до 100 частей - 0,05 М трис-HCl буфер, pH 9,5.

Определение жизнеспособности яиц дикроцелиума по методу Гер­ман, Беэра, Стратана. Каплю взвеси, содержащую 100-150 яиц тре­матоды, помещают в центрифужную пробирку на 1-2 мин для осаждения яиц. Затем жидкость осторожно подсушивают с помощью полоски фильтровальной бумаги. Добавляют пастеровской пипет­кой 1-2 капли реакционной среды и инкубируют на водяной бане при 28-30 °С 2-3 мин. Состав среды: 6 частей бутанола, 94 части 0,4 % раствора хлорида натрия или 0,3 % раствора хлорида калия в дистиллированной воде. Яйца в среде переносят пипеткой на пред­метное стекло и оставляют на 1,5-2 ч при комнатной температуре (18-22 °С), при этом каждые 25-30 мин (по мере подсыхания) до­бавляют по 1-2 капли (0,05 мл) раствора бутанола в дистиллиро­ванной воде. После этого препарат микроскопируют при 100-200- кратном увеличении. Жизнеспособность определяют по числу рас­крывшихся яиц с вышедшими мирацидиями. Бутанол проникает через поры оболочки яиц, достигает мирацидиев и активизирует их. Инкубация при отмеченной температуре усиливает этот процесс. Бутанол в концентрации 3-7 % губителен для вышедшего из яйца мирацидия. Перенос взвеси яиц из пробирки на предметное стекло позволяет к моменту выхода мирацидия (через 30-40 мин) снизить концентрацию бутанола за счет улетучивания до безопасного уровня (1,5-0,5 %). Наличие в среде хлорида натрия в концентрации 0,1- 0,5 % (или хлорида калия в концентрации 0,05-0,4 %) обусловли­вает активность вышедшего мирацидия. В отличие от мелких про­зрачных яиц описторха яйца дикроцелиума имеют темноокрашенную оболочку, у них хорошо заметна крышечка, открытая после выхода мирацидия. Поэтому жизнеспособность яиц дикроцелиума удобнее оценивать путем подсчета раскрывшихся яиц, а не окраши­вания и подсчета мирацидиев.

Люминесцентный метод исследования яиц и личинок гельминтов.

Впервые в гельминтологической практике методы люминесцентной микроскопии были применены в 1955 г. При этом сообщалось, что люминесцентная микроскопия дает возможность дифференциро­вать живые и мертвые объекты без повреждения яйца. Для флюо­ресценции использовались не УФ-лучи, а сине-фиолетовая часть видимого света, с обычным микроскопом и предметными стекла­ми; к осветителю «ОИ-18» применялся специальный набор цветных фильтров.

Было установлено, что живые и мертвые яйца аскарид, остриц, карликовых цепней, бычьего цепня, широкого лентеца и других гель­минтов люминесцируют неодинаково. Это явление наблюдается как при первичной люминесценции без применения красителей, так и при окраске флюорохромами (акридиновый оранжевый, корифосфин, примулин,ауролин,сульфат берлерина, трипафлавин,риванол, акрихин и др.).

Неокрашенные живые несегментированные яйца аскарид светятся ярко-зеленым светом с желтоватым оттенком; у мертвых яиц обо­лочка излучает зеленый свет значительно ярче, чем темно-зеленая зародышевая; у яиц аскарид с личинкой проявляется только оболоч­ка, а у мертвых и оболочка, и личинка ярко-желтого цвета.

Непигментированные и несегментированные живые яйца остриц и карликовых цепней излучают зеленовато-желтый свет; у мертвых яиц интенсивно люминесцирует оболочка на фоне темно-зеленой зародышевой массы. При вторичной люминесценции (при окраске акридиновым оранжевым в разведении 1:10 ООО и 1: 50 ООО от 30 мин до 2 ч) оболочка живых и мертвых нематод, трематод и цестод люминесцирует неодинаково.

Скорлупа живых и мертвых Ascaris lumbricoides, Toxocara leonina, Enterobius vermicularis, Hymenolepis nana, H.fraterna, H. diminuta, T.saginatus, D.latum окрашивается в оранжево-красный цвет. Зародыши живых Asc. lumbricoides, T.leonina, H.diminuta, D.latum и онкосферы бычьего цепня люминесцируют тусклым темно-зеленым или серо-зеленым цветом. Мертвые зародыши этих яиц гельминтов излучают «горящий» оранжево-красный свет. Живые личинки ост­риц и токсокар (освобожденные от скорлупы яйца) излучают туск­лый серо-зеленый свет, при их гибели цвет изменяется от головного конца в «горящий» светло-зеленый, затем желтый, оранжевый и, наконец, ярко-оранжевый.

При окраске флюорохромами - корифосфилом, примулином - у мертвых яиц аскарид и власоглавов наблюдается свечение от ли­лово-желтого до медно-красного цвета. Жизнеспособные яйца не люминесцируют, а окрашиваются в темно-зеленый цвет. Живые яйца трематод Paragonimus westermani и Clonorchis sinensis не люминес­цируют после окраски акридиновым оранжевым, а от мертвых яиц исходит желтовато-зеленый свет.

Метод люминесценции может быть применен и для определения жизнеспособности личинок гельминтов. Так, флюорохромированные раствором акридинового оранжевого (1:2000) личинки строн­гилят, рабдитат светятся: живые - зеленым (с оттенком), мерт­вые - ярко-оранжевым светом. Живые личинки трихинелл не светятся или дают слабое свечение при 10-минутной обработке ра­створами изотиоцианата флюоресцеина, аурамина и др. Флюорохромированные мертвые личинки (в концентрации 1:5000) дают яр­кое свечение.

Живые мирацидии, вышедшие из оболочки, излучают тусклый голубоватый свет с еле заметным светло-желтым венчиком ресни­чек, но спустя 10-15 мин после гибели проявляются ярким «горя­щим» светло-зеленым, а затем оранжево-красным светом.